Вышедшие номера
Высокоэффективные воспроизводимые зонды для спектроскопии комбинационного рассеяния с усилением на острие (TERS)
Переводная версия: 10.1134/S1063785020110103
Russian Science Foundation, 19-14-00171
Мочалов К.Е. 1, Соловьева Д.О. 1,2, Ефимов А.Е. 3,4, Клинов Д.В. 5, Олейников В.А. 1,2
1Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН, Москва, Россия
2Национальный исследовательский ядерный университет "МИФИ", Москва, Россия
3Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов им. ак. В.И. Шумакова Минздрава России, Москва, Россия
4ООО "СНОТРА", Москва, Россия
5Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины ФМБА, Москва, Россия
Email: mochalov@mail.ru, d.solovieva@mail.ru, antefimov@gmail.com, klinov.dmitry@mail.ru, voleinik@mail.ru
Поступила в редакцию: 12 мая 2020 г.
В окончательной редакции: 28 июля 2020 г.
Принята к печати: 28 июля 2020 г.
Выставление онлайн: 27 августа 2020 г.

Основное ограничение применения микроспектроскопии комбинационного рассеяния с усилением на острие (tip-enhanced Raman scattering, TERS) связано с отсутствием надежных сканирующих зондов. Представлена простая методика формирования TERS-зондов с высоковоспроизводимыми характеристиками, надежными и дающими достаточное усиление. Методика основана на модификации стандартных кантилеверов сканирующих зондовых микроскопов плазменным травлением с последующим формированием TERS-усиливающей области на вершине путем осаждения коллоидных наночастиц методом диэлектрофореза. Ключевые слова: микроспектроскопия комбинационного рассеяния с усилением на острие, TERS, сканирующая зондовая микроскопия, сканирующий зондовый микроскоп (СЗМ), зонды СЗМ,
  1. Shao F., Zenobi R. // Anal. Bioanal. Chem. 2019. V. 411. N 1. P. 37--61. DOI: 10.1007/s00216-018-1392-0
  2. Deckert-Gaudig T., Taguchi A., Kawata S., Deckert V. // Chem. Soc. Rev. 2017. V. 46. N 13. P. 4077--4110. DOI: 10.1039/c7cs00209b
  3. Yuan C.C., Zhang D., Gan Y. // Rev. Sci. Instrum. 2017. V. 88. N 3. P. 031101. DOI: 10.1063/1.4978929
  4. Fujita Y., Walke P., De Feyter S., Uji-i H. // Jpn. J. Appl. Phys. 2016. V. 55. N 8S1. P. 08NA02. DOI: 10.7567/jjap.55.08na02
  5. Walke P., Fujita Y., Peeters W., Toyouchi S., Frederickx W., De Feyter S., Uji-i H. // Nanoscale. 2018. V. 10. N 16. P. 7556--7565. DOI: 10.1039/c8nr02225a
  6. Taguchi A., Yu J., Verma P., Kawata S. // Nanoscale. 2015. V. 7. N 41. P. 17424--17433. DOI: 10.1039/c5nr05022g
  7. SweetenhamC.S., WoolleyR.A.J., NotingheI.//J.Nanophoton. 2016. V. 10. N 3. P. 030502. DOI: 10.1117/1.jnp.10.030502
  8. Leiterer C., Wunsche E., Singh P., Albert J., Kohler J.M., Deckert V., Fritzsche W. // Anal. Bioanal. Chem. 2016. V. 408. N 13. P. 3625--3631. DOI: 10.1007/s00216-016-9447-6
  9. Gakiya-Teruya M., Palomino-Marcelo L., Rodriguez-Reyes J. // J. Meth. Protocols. 2018. V. 2. N 1. P. 3. doi.org/10.3390/mps2010003
  10. Mochalov K.E., Chistyakov A.A., Solovyeva D.O., Mezin A.V., Oleinikov V.A., Vaskan I.S., Molinari M., Agapov I.I., Nabiev I., Efimov F.E. // Ultramicroscopy. 2017. V. 182. P. 118--123. DOI: 10.1016/j.ultramic.2017.06.022
  11. Efimov A.E., Agapov I.I., Agapova O.I., Oleinikov V.A., Mezin A.V., Michael M., Nabiev I., Mochalov K.E. // Rev. Sci. Instrum. 2017. V. 88. N 2. P. 023701. DOI: 10.1063/1.4975202
  12. Kaniyoor A., Ramaprabhu S. // AIP Adv. 2012. V. 2. N 3. P. 032183. DOI: 10.1063/1.4756995
  13. Smolsky J.M., Krasnoslobodtsev A.V. // Nano Res. 2018. V. 11. N 12. P. 6346--6359. DOI: 10.1007/s12274-018-2158-x

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.