Вышедшие номера
Home » Журнал технической физики » Год 2026, выпуск 11 » Статья стр. 2188
<<<>>>
Влияние структурных различий систем доставки доксорубицина на их функциональные характеристики
Грантов нет
Сударева Н.Н.1, Суворова О.М.1, Сапрыкина Н.Н.1, Шевченко Н.Н.1, Лаврентьев В.К.1, Попова Е.Н.1, Власова Е.Н.1, Колбе К.А.1, Смирнова Н.В.1
1Национальный исследовательский центр " Курчатовский институт" --- Петербургский институт ядерной физики --- Институт высокомолекулярных соединений, Санкт- Петербург, Россия
Email: nnsas@mail.ru, ihs-9@yandex.ru, elmic@hq.macro.ru, natali.shevchenko29@gmail.com, lavrentev1949@mail.ru, men682003@mail.ru, evl021960@gmail.com, kkolbe@yandex.ru, nvsmirnoff@yandex.ru
Поступила в редакцию: 27 февраля 2026 г.
В окончательной редакции: 28 июля 2026 г.
Принята к печати: 31 июля 2026 г.
Выставление онлайн: 21 сентября 2026 г.
PDF версия
Методами сканирующей электронной микроскопии, N2-сорбционного анализа, рентгеноструктурного анализа, термогравиметрического анализа и инфракрасной спектроскопии исследованы структуры двух вариантов систем доставки противоракового антибиотика доксорубина - ватеритов карбоната кальция и допированных систем - ватеритов карбоната кальция, покрытых полианионом декстрансульфатом Na. Сравнительные функциональные характеристики систем (помимо загрузки и высвобождения) определяли, используя колориметрический метод для оценки пролиферации клеток в присутствии систем доставки. Захват обоих вариантов систем доставки клетками разного типа (макрофагами, раковыми клетками и фибробластами) определяли с помощью оптической микроскопии с флуоресцентным детектированием. Установлено, что поглощение клетками допированных систем доставки происходит интенсивнее, чем ватеритов карбоната кальция, что должно обеспечить высокую противораковую активность допированных карбонатов кальция с инкапсулированным доксорубицином. Ключевые слова: декстрансульфат Na, N2-сорбционный анализ, термогравиметрия, рентгеноструктурный анализ, ИК-фурье спектроскопия, пролиферация, поглощение клетками.
  1. A. Gonzalez Gomez, Z. Hosseinidoust. ACS Infect. Dis., 6, 896 (2020). DOI: 10.1021/acsinfecdis.9b00357
  2. E.G. Korzhikova-Vlakh, A.Y. Dzhuzha, V.D. Matvienko, G.A. Platonova, T.B. Tennikova. Pol. Sci. A, 66 (1), 57 (2024). DOI: 10.1134/S0965545X24600194
  3. I. Negut, V. Grumezescu, G. Dorcioman, G. Socol. Syst. Design Fabr., (2017). DOI: 10.1016/B978-0-323-52727-9.00001-7
  4. B. Singh, J. Na, M. Konarova, T. Wakihara, Y. Yamauchi, C. Salomon, M.B. Gawande. Bull. Chem. Soc. Jpn., 93 (12), 1459 (2020). DOI: 10.1246/bcsj.20200136
  5. R. Tan, D. Tian, J. Liu, C. Wang, Y. Wan. Intern. J. Nanomed., 16, 4527 (2021). DOI: 10.2147/IJN.S314705
  6. T. Husain, M. Shoaib, F. Ahmed, R. Yousuf, S. Farooqi, F. Siddiqui, M. Imtiaz, M. Maboos, S. Jabeen. Intern. J. Nanomed., 16, 1725 (2021). DOI: 10.2147/IJN.S299261
  7. T. Liang, R. Zhang, X. Liu, Q. Ding, S. Wu, C. Li, Y. Lin, Y. Ye, Z. Zhong, M. Zhou. Intern. J. Nanomed., 16, 2703 (2021). DOI: 10.2147/IJN.S298159
  8. D.V. Volodkin, A.I. Petrov, M. Prevot, G.B. Sukhorukov. Langmuir, 20 (8), 3398 (2004). DOI: 10.1021/la036177z
  9. S.V. German, M.V. Novoselova, D.N. Bratashov, P.A. Demina, V.S. Atkin, D.V. Voronin, B.N. Khlebtsov, B.V. Parakhonskiy, G.B. Sukhorukov, D.A. Gorin. Sci. Rep., 8, 1 (2018). DOI: 10.1038/s41598-018-35846-x
  10. F. Aguilar, B. Dusemund, P. Galtier, J. Gilbert, D.M. Gott, S. Grilli, R. Gurtler, J. Konig, C. Lambre, J.-C. Larsen, J.-C. Leblanc, A. Mortensen, D. Parent-Massin, I. Pratt, I.M.C.M. Rietjens, I. Stankovic, P. Tobback, T. Verguieva, R.A. Woutersen. EFSA J., 9, 1 (2011). DOI: 10.2903/j.efsa.2011.2318
  11. N. Sudareva, O. Suvorova, N. Saprykina, N. Smirnova, P. Bel'tyukov, S. Petunov, A. Radilov, A. Vilesov. J. Microencaps., 35 (8), 619 (2018). DOI: 10.1080/02652048.2018.1559247
  12. S. Chen, F. Li, R. Zhuo, S. Mol. BioSyst., 7, 2841 (2011). DOI: 10.1039/c1mb05147d
  13. A.M. Ferreira, A.S. Vikulina, D. Volodkin. J. Controll. Release., 328, 470 (2020). DOI: 10.1016/j.jconrel.2020.08.061
  14. D.B. Trushina, T.N. Borodina, S. Belyakov, M.N. Antipina. Mater. Today Adv., 14, 100214 (2022). DOI: 10.1016/j.mtadv.2022.100214
  15. N.N. Sudareva, O.M. Suvorova, V.Y. Elokhovsky, A.S. Krasova, E.R. Gasilova, E.N. Vlasova, N.N. Saprykina, O.V. Ostreyko. Cell. Ther. Transplant., 14 (3), 74 (2025). DOI: 10.18620/ctt-1866-8836-2025-14-3-74-81
  16. A.S. Timin, A.S. Postovalova, T.E. Karpov, D. Antuganov, A.S. Bukreeva, D.R. Akhmetova, A.S. Rogova, A.R. Muslimov, S.A. Rodimova, D.S. Kuznetsova, M.V. Zyuzin. J. Contr. Release, 344, 1 (2022). DOI: 10.1016/j.jconrel.2022.02.021
  17. M.V. Zyuzin, D. Antuganov, Y.V. Tarakanchikova, T.E. Karpov, T.V. Mashel, E.N. Gerasimova, O.O. Peltek, N. Alexandre, S. Bruyere, Y.A. Kondratenko, A.R. Muslimov, A.S. Timin. ACS Appl. Mater. Interfaces., 12 (28), 31137 (2020). DOI: 10.1021/acsami.0c06996
  18. S. Westrm, T.B. Bnsdorff, S. Bruland, R.H. Larsen. Transl. Oncol., 11 (2), 259 (2018). DOI: 10.1016/j.tranon.2017.12.011
  19. Д.Б. Трушина, Т.Н. Бородина, В.В. Артемов, Т.В. Букреева. ЖТФ, 88 (9), 1387 (2018). DOI: 10.21883/JTF.2018.09.46426.52-18 [D.B. Truschina, T.N. Borodina, V.V. Artemov, T.D. Bukreeva. Tech. Phys., 63 (9), 1345 (2018). DOI: 10.1134/S1063784218090220]
  20. D. Volodkin. Adv. Coll. Interface Sci., 207, 306 (2014). DOI: 10.1016/j.cis.2013.11.011
  21. S. Taheri, D.V. Volodkin, G. Skirtach, B.V. Parakhonskiy. Expert Opinion Drug Deliv., (2025). DOI: 10.1080/17425247.2025.2587907
  22. Q. Zhao, B. Han, Z. Wang, C. Gao, C. Peng, J. Shen. Nanomed: Nanotechnol, Biol., Med., 3, 63 (2007). DOI: 10.1016/j.nano.2006.11.007
  23. A.R. Muslimov, D. Antuganov, Y.V. Tarakanchikova, T.E. Karpov, M.V. Zhukov, M.V. Zyuzin, A.S. Timin. J. Controll. Rel., 330, 726 (2021). DOI: 10.1016/j.jconrel.2021.01.008
  24. N. Sudareva, O. Suvorova, N. Saprykina, A.D. Vilesov, P. Bel'tyukov, S. Petunov. J. Microencapsul., 33 (5), 487 (2016). DOI: 10.1080/02652048.2016.1206146
  25. J.L. Wu, C.Q. Wang, R.X. Zhuo, S.X. Cheng. Colloids Surf. B: Biointerfaces, 123 (1), 498 (2014). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2014.09.047
  26. S. Chen, D. Zhao, F. Li, R. Zhuo, S. Cheng. RSC Adv., 2, 1820 (2012). DOI: 10.1039/c1ra00527h
  27. L. Li, Y.L. Yang, P. Yin, T. Lei. Coll. Surf. B: Biointerfaces, 186, 110720 (2020). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2019.110720
  28. A.V. Mikheev, P.I. Mishin, T.N. Pallaeva, V.V. Artemov, I.A. Kasyanov, D.V. Mosievich, A.A. Abalymov, N.G. Balabushevich, D.B. Trushina, T.V. Bukreeva. Intern. J. Biol. Macromol, 373, 153152 (2026). DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2026.153152
  29. N. Sudareva, O. Suvorova, N. Saprykina, N. Tomson, D. Suslov, O. Galibin, A. Vilesov. Cell Ther. Transpl., 10 (1), 79 (2021). DOI: 10.18620/ctt-1866-8836-2021-10-1-79-85
  30. A. Abalymov, R. Verkhovskii, M. Novoselova, B. Parakhonskiy, D. Gorin, A. Yashchenok, G. Sukhorukov. Biotechnol. J., 13, 18000712018 (2018). DOI: 10.1002/biot.201800071
  31. K. Cho, X. Wang, S. Nie, Z. (G.) Chen, D.M. Shin. Clin. Canc. Res., 14, 1310 (2008). DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-07-1441
  32. N. Sudareva, O. Suvorova, K. Kolbe, D. Suslov, O. Galibin, A. Vilesov, G. Yukina, E. Sukhorukova. Cell Ther. Transplant., 11 (3-4), 87 (2022). DOI: 10.18620/ctt-1866-8836-2022-11-3-4-87-92
  33. Н.Н. Сударева, О.М. Суворова, Н.Н. Сапрыкина, К.А. Колбе, Н.В. Смирнова, Д.Н. Суслов. ЖТФ, 94 (9), 1509 (2024). DOI: 10.61011/JTF:2024.09.58671.55-24
  34. T. Mosmann. J. Immunol. Methods, 65, 55 (1983). DOI: 10.1016/0022-1759(83)90303-4
  35. D. Kalyane, N. Raval, R. Maheshwari, V. Tambe, K. Kalia, R.K. Tekade. Mater. Sci. Engin. C, 98, 1252 (2019). DOI: 10.1016/j.msec.2019.01.066
  36. A. Chichagov. Crystall Reports., 35 (3), 610 (1990)
  37. V.L. Kudryavtseva, L. Zhao, S.I. Tverdokhlebov, G.B. Sukhorukov. Coll. Surf. B: Biointerfaces, 157 (1), 481 (2017). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2017.06.011
  38. V. Lauth, M. Maas, K. Rezwan. Mater. Sci. Engin. C, 78, 305 (2017). DOI: 10.1016/j.msec.2017.04.037
  39. L.J. Bellamy. The infrared spectra of complex molecules (Chapman and Hall, London, 1975)
  40. N. Sudareva, O. Suvorova, N. Saprykina, H. Vlasova, A. Vilesov. J. Microencapsul, 38 (3), 164 (2021). DOI: 10.1080/02652048.2021.1872724
  41. S. Sharma, A. Verma, B.V. Teja, G. Pandey, N. Mittapelly, R. Trivedi, P.R. Mishra. Coll. Surf. B: Biointerfaces, 133, 120 (2015). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2015.05.014
  42. J. Yu, L. Wang, X. Xie, W. Zhu, Z. Lei, L. Lv, H. Yu, J. Xu, J. Ren. Intern. J. Nanomed., 18, 323 (2023). DOI: 10.2147/IJN.S394896
  43. P.V. Binevski, N.G. Balabushevich, V.I. Uvarova, A.S. Vikulina, D. Volodkin. Coll. Surf. B: Biointerfaces, 181, 437 (2019). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2019.05.077
  44. D. Neri, C.T. Supuran. Nature Rev. Drug Discovery, 10, 767 (2011). DOI: 10.1038/nrd3554
  45. A. Som, R. Raliya, L. Tian, W. Akers, J. Ippolito, S. Singamanenid, P. Biswas, S. Achilefu. Nanoscale, 8 (25), 12639 (2016). DOI: 10.1039/x0xx00000x
  46. J. Finean, R. Colemanand, R. Michell. Membranes and their cellular functions (Blackwell Science Publication, Oxford, 1974)
  47. E. Frohlich. Int. J. Nanomed., 7, 5577 (2012). DOI: 10.2147/IJN.S36111
  48. N. Doshi, S. Mitragotri. PLОS One., 5, e10051 (2010). DOI: 10.1371/journal.pone.0010051
  49. X.P. Lin, J.D. Minterm, P.A. Gleeson. Membranes (Basel), 10, 177 (2020). DOI: 10.3390/membranes10080177
  50. C.S. Hurlbut, C. Klein. Manual of mineralogy. (John Wiley and Sons, NY., 1985)
  51. N. Sudareva, H. Popova, N. Saprykina, S. Bronnikov. J. Microencapsul, 31 (4), 333 (2014). DOI: 10.3109/02652048.2013.858788

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2026 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme