Вышедшие номера
Корреляционная экстремальная ультрафиолетовая, ультрафиолетовая и оптическая микроскопия на базе зеркального микроскопа с аксиальной томографией
Российский научный фонд, 22-62-00068
Малышев И.В.1, Реунов Д.Г.1, Чхало Н.И.1, Торопов М.Н.1, Пестов А.Е.1, Полковников В.Н.1, Чернышев А.К.1, Плешков Р.С.1, Казаков Е.П.2,3, Лаврушкина С.В.2, Голышев С.А.2, Поспелов А.Д.4, Широкова О.М.
1Институт физики микроструктур Российской академии наук, Нижний Новгород, Россия
2Научно-исследовательский институт Физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
3Биологический факультет Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
4Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского, Нижний Новгород, Россия
Email: reunov_dima@ipmras.ru
Поступила в редакцию: 6 мая 2024 г.
В окончательной редакции: 6 мая 2024 г.
Принята к печати: 6 мая 2024 г.
Выставление онлайн: 27 июля 2024 г.

Рассмотрено применение зеркального экстремального ультрафиолетового микроскопа с 46-кратным разрешением до 140 nm для исследования образцов на трех длинах волн: 13.84, 200 и 535 nm. Возможность видеть одну область образца на разных длинах волн дает дополнительную информацию о его структуре. Выбор длины волны происходит за счет смены источников: светодиод или газовый лазерно-плазменный источник, а также ввода-вывода многослойного фильтра, отсекающего все, кроме 13.84 nm. Для трехмерной реконструкции проведено сканирование образца вдоль оптической оси на пьезоактуаторе. При реконструкции изображений по томографическим данным использована функция рассеяния точки, смоделированной на основе измеренных на интерферометре аберраций. Ключевые слова: экстремальная ультрафиолетовая микроскопия, ультрафиолетовая микроскопия, аксиальная томография, электронная микроскопия, мягкая рентгеновская микроскопия.
  1. E. Hanssen, Ch. Knoechel, M. Dearnley, M.W.A. Dixon, M. Le Gros, C. Larabell, L. Tilley. J. Struct. Biol., 177, 224 (2012). DOI: 10.1016/j.jsb.2011.09.003
  2. D. Sage, L. Donati, F. Soulez, D. Fortun, G. Schmit, A. Seitz, R. Guiet, C. Vonesch, M. Unser. Methods, 115, 28 (2017). DOI: 10.1016/j.ymeth.2016.12.015
  3. L. Schermelleh, R. Heintzmann, H. Leonhardt. J. Cell Biol., 190 (2), 165 (2020). DOI: 10.1083/jcb.201002018
  4. V. Luvcic, A. Rigort, W. Baumeister. J. Cell Biol., 202 (3), 407 (2013). DOI: 10.1083/jcb.201304193
  5. K. Leigh, P. Navarro, S. Scaramuzza, W. Chen, Y. Zhang, D. Casta\`no-Di ez, M. Kudryashev. Methods Cell Biol., 152, 217 (2019)
  6. M. Kordel, A. Dehlinger, C. Seim, U. Vogt, E. Fogelqvist, J.A. Sellberg, H. Stiel, H.M. Hertz. Optica, 7 (6), 658 (2020). DOI: 10.1364/OPTICA.393014
  7. B. Rosner, F. Koch, F. Doring, V.A. Guzenko, M. Meyer, J.L. Ornelas, A. Spath, R.H. Fink, S. Stanescu, S. Swaraj, R. Belkhou, B. Watts, J. Raabe, C. David. Microsc. Microanal., 24, 272 (2018)
  8. I. Kounatidis, M.L. Stanifer, M.A. Phillips, P. Paul-Gilloteaux, X. Heiligenstein, H. Wang, Ch.A. Okolo, Th.M. Fish, M.C. Spink, D.I. Stuart, I. Davis, S. Boulant, J.M. Grimes, I.M. Dobbie, M. Harkiolaki. Cell., 182 (2), 515 (2020). DOI: 10.1016/j.cell.2020.05.051I
  9. A. Gianoncelli, V. Bonanni, G. Gariani, F. Guzzi, L. Pascolo, R. Borghes, F. Bille, G. Kourousias. Appl. Sci., 11 (16), 7216 (2021). DOI: 10.3390/app11167216
  10. T. Parkman, M. Nevrkla, A. Janvcarek, J. Turvnova, D. Panek, M. Vrbova. Appl. Sci., 10 (18), 6373 (2020). DOI: 10.3390/app10186373
  11. И.А. Артюков, А.В. Виноградов, Е.А. Бугаев, А.Ю. Девизенко, В.В. Кондратенко, Ю.С. Касьянов. ЖЭТФ, 136 (5), 1009 (2009)
  12. M. Toyoda, K. Yamasoe, T. Hatano, M. Yanagihara, A. Tokimasa, T. Harada, T. Watanabe, H. Kinoshita. Appl. Phys. Express., 5 (11), 112501 (2012). DOI: 10.1143/APEX.5.112501
  13. L. Juschkin, R. Freiberger, K. Bergmann. J. Phys.: Conf. Ser., 186, 012030 (2009)
  14. A. Torrisi, P. Wachulak, . Wegrzynski, T. Fok, A. Bartnik, T. Parkman, vS. Vondrova, J. Turvvnova, B.J. Jankiewicz, B. Bartosewicz, H. Fiedorowicz. J. Microscopy, 00 (0), 1 (2016). DOI: 10.1111/jmi.12494A
  15. P.W. Wachulak, A. Torrisi, A. Bartnik, . Wegrzynski, T. Fok, H. Fiedorowicz. Appl. Phys. B, 123, 25 (2017). DOI: 10.1007/s00340-016-6595-5
  16. T. Ejima, F. Ishida, H. Murata, M. Toyoda, T. Harada, T. Tsuru, T. Hatano, M. Yanagihara, M. Yamamoto, H. Mizutani. Opt. Express, 18 (7), 7203 (2010). DOI: 10.1364/OE.18.007203
  17. P.A.C. Takman, H. Stollberg, G.A. Johansson, A. Holmberg, M. Lindblom, H.M. Hertz. J. Microscopy, 226, 175 (2007)
  18. C.A. Larabell, M.A. Le Gros. Molec. Biol. Cell, 15, 957 (2004)
  19. D. Weib, G. Schneider, B. Niemann, P. Guttmann, D. Rudolph, G. Schmah. Ultramicr., 84, 185 (2000)
  20. M. Bertilson, O. von Hofsten, U. Vogt, A. Holmberg, A.E. Christakou, H.M. Hertz. Opt. Lett., 36 (14), 2728 (2011). DOI: 10.1364/OL.36.002728
  21. E. Fogelqvist, M. Kordel, V. Carannante, B. Onfelt, H.M. Hertz. Sci. Rep., 7, 13433 (2017)
  22. H.M. Hertz, O. von Hofsten, M. Bertilson. J. Str. Biol., 177 (2), 267 (2012)
  23. P.W. Wachulak, A. Torrisi, A. Bartnik, L. Wegrzynski, T. Fok, H. Fiedorowicz. J. Phys.: Conf. Ser., 849, 012050 (2017). DOI: 10.1088/1742-6596/849/1/012050
  24. E. Hanssen, C. Knoechel, M. Dearnley. J. Struct. Biol., 177, 224 (2012)
  25. V. Loconte, J.-H. Chen, M. Cortese, A. Ekman, M.A. Le Gros, C. Larabell, R. Bartenschlager, V. Weinhardt. Cell Reports Methods, 1 (7), 100117 (2021). DOI: 10.1016/j.crmeth.2021.100117
  26. J.-H. Chen, B. Vanslembrouck, V. Loconte, A. Ekman, M. Cortese, R. Bartenschlager, G. McDermott, C.A. Larabell, M.A. Le Gros, V. Weinhardt. STAR Protocols, 3 (1), 101176 (2022). DOI: 10.1016/j.xpro.2022.101176
  27. B. Rosner, F. Koch, F. Doring, V.A. Guzenko, M. Meyer, J.L. Ornelas, A. Spath, R.H. Fink, S. Stanescu, S. Swaraj. Microsc. Microanalysis, 24, 270 (2018). DOI: 10.1017/S1431927618013697
  28. W. Chao, P. Fischer, T. Tyliszczak. Opt. Express, 20, 9777 (2012)
  29. V. De Andrade, V. Nikitin, M. Wojcik. Adv. Mater., 33, 2008653 (2021)
  30. I.V. Malyshev, N.I. Chkhalo. Ultramicroscopy, 202, 76 (2019)
  31. Электронный ресурс. Режим доступа: https://www.euvlitho.com/2018/P22.pdf
  32. N.I. Chkhalo, I.V. Malyshev, A.E. Pestov, V.N. Polkovnikov, N.N. Salashchenko, M.N. Toropov, A.A. Soloviev. Appl. Optics, 55 (3), 619 (2016). DOI: 10.1364/AO.55.000619
  33. Н.И. Чхало, И.В. Малышев, А.Е. Пестов, В.Н. Полковников, Н.Н. Салащенко, М.Н. Торопов. УФН, 190 (1), 74 (2020). DOI: 10.3367/UFNr.2019.05.038601
  34. N.I. Chkhalo, I.A. Kaskov, I.V. Malyshev. Prec. Eng., 48, 338 (2017)
  35. I.V. Malyshev, D.G. Reunov, N.I. Chkhalo. Opt. Express, 30 (26), 47567 (2022)
  36. А.Н. Нечай, А.А. Перекалов, Н.Н. Салащенко, Н.И. Чхало. Опт. и спектр., 129 (2), 146 (2021)
  37. А.В. Водопьянов, С.А. Гарахин, И.Г. Забродин, С.Ю. Зуев, А.Я. Лопатин, А.Н. Нечай, А.Е. Пестов, А.А. Перекалов, Р.С. Плешков, В.Н. Полковников, Н.Н. Салащенко, Р.М. Смертин, Б.А. Уласевич, Н.И. Чхало. Квантовая электроника, 51 (8), 700 (2021). [A.V. Vodop'yanov, S.A. Garakhin, I.G. Zabrodin, S.Yu. Zuev, A.Ya. Lopatin, A.N. Nechay, A.E. Pestov, A.A. Perekalov, R.S. Pleshkov, V.N. Polkovnikov, N.N. Salashchenko, R.M. Smertin, B.A. Ulasevich, N.I. Chkhalo. Quantum Electron., 51, 700 (2021). DOI: 10.1070/QEL17598]
  38. N.I. Chkhalo, E.B. Kluenkov, A.Ya. Lopati et al. Thin Solid Films, 631, 93 (2017)
  39. M. Toropov, N. Chkhalo, I. Malyshev, N. Salashchenko. Opt. Lett., 47 (14), 3459 (2022)
  40. A.A. Akhsakhalyan, N.I. Chkhalo, N. Kumar, I.V. Malyshev et al. Prec. Eng., 72, 330 (2021)
  41. Электронный ресурс. Режим доступа: https://www.optics-pro.com/botany/lieder-convallaria-maigloeckchen-rhizom-quer-konzentrische-leitbuendel/p,64540
  42. A.D. Pospelov, O.M. Kutova, Y.M. Efremov, A.A. Nekrasova, D.B. Trushina, S.D. Gefter, E.I. Cherkasova, L.B. Timofeeva, P.S. Timashev, A.V. Zvyagin, I.V. Balalaeva. Cells, 12, 2030 (2023). DOI: 10.3390/cells12162030