Вышедшие номера
Получение нерастворимых в воде пленок из фиброина шелка, исследование их структуры и свойств
Нащекина Ю.А.1,2,3, Коныгина В.С.2, Попова Е.Н.3, Кодолова-Чухонцева В.В.2, Нащекин А.В., Юдин В.Е.2,3
1Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург, Россия
2Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, Санкт-Петербург, Россия
3Институт высокомолекулярных соединений Российской академии наук, Санкт-Петербург, Россия
Поступила в редакцию: 16 августа 2021 г.
В окончательной редакции: 13 сентября 2021 г.
Принята к печати: 13 сентября 2021 г.
Выставление онлайн: 2 октября 2021 г.

Отработаны условия получения нерастворимого в воде фиброина шелка в виде пленок. С помощью оптической микроскопии продемонстрировано изменение морфологии поверхности пленок, обусловленное структурным переходом в крупно-фрагментированное состояние в результате обработки пленок метиловым спиртом. Методом ИК-Фурье спектроскопии подтвержден конформационный переход фиброина шелка от неупорядоченной структуры необработанной пленки в β-складчатую структуру. Методом д.-сканирующей калориметрии определена температура стеклования нативной пленки - 216oC. Исследование механических свойств пленок из фиброина шелка в жидкой среде показало, что их прочность снижается, а эластичность увеличивается почти в 15 раз по сравнению с испытаниями этих же пленок в сухом состоянии. Ключевые слова: фиброин шелка, метанол, ИК-Фурье спектроскопия, дифференциально-сканирующая калориметрия, термогравиметрический анализ, оптическая микроскопия, механические свойства.
  1. Ю.А. Нащекина, О.А. Луконина, Д.М. Дарвиш, А.В. Нащекин, В.Ю. Елоховский, В.Е. Юдин, Н.А. Михайлова. ЖТФ, 90 (9), 1596 (2020). DOI: 10.21883/JTF.2020.09.49697.33-20 [Yu.A. Nashchekina, O.A. Lukonina, D.M. Darvish, A.V. Nashchekin, V.Yu. Elokhovskii, V.E. Yudin, N.A. Mikhailova. Tech. Phys., 65, 1535 (2020). DOI: 10.1134/S1063784220090224]
  2. Ю.А. Нащекина, О.А. Луконина, Н.А. Михайлова. Цитология, 62 (7), 1 (2020). DOI: 10.31857/S0041377120070044
  3. И.П. Добровольская, В.Е. Юдин, П.В. Попрядухин, Е.М. Иванькова. Полимерные матрицы для тканевой инженерии. (Издательско-полиграф. ассоциация университетов России, СПб., 2016)
  4. Ю.А. Нащекина, П.О. Никонов, Н.М. Юдинцева, А.В. Нащекин, А.И. Лихачев, О.А. Москалюк, В.Е. Юдин, М.И. Блинова. Цитология, 58 (11), 843 (2016)
  5. B. Panilaitis, G.H. Altman, J. Chen, H.J. Jin, V. Karageorgiou, D.L. Kaplan. Biomaterials, 24, 3079 (2003)
  6. L. Meinel, S. Hofmann, V. Karageorgiou, C. Kirker-Head, J. McCool, G. Gronowicz, L. Zichner, R. Langer, G. Vunjak-Novakovic, D.L. Kaplan. Biomaterials, 26, 147 (2005)
  7. H.J. Kim, U.J. Kim, G. Vunjak-Novakovic, B.H. Min, D.L. Kaplan. Biomaterials. 26, 4442 (2005)
  8. Y. Wang, D.D. Rudym, A. Walsh, L. Abrahamsen, H.J. Kim, H.S. Kim, C. Kirker-Head, D.L. Kaplan. Biomaterials, 29, 3415 (2008)
  9. C. Holland, K. Numata, J. Rnjak-Kovacina, F.P. Seib. Adv. Healthc. Mater., 8:e1800465. (2019). DOI: 10.1002/adhm.201800465
  10. M. Parekh, V. Romano, K. Hassanin, V. Testa, R. Wongvisavavit, S. Ferrari, A. Haneef, C. Willoughby, D. Ponzin, V. Jhanji, N. Sharma, J. Daniels, S.B. Kaye, S. Ahmad, H.J. Levis. Tissue Eng., 12, 1 (2021). DOI: 10.1177/2041731421990536
  11. P. Bhattacharjee, J. Fernandez-Perez, M. Ahearne. Mat. Sci. Eng. C., 105, 110093 (2019). DOI: 10.1016/j.msec.2019.110093
  12. Л.А. Сафонова, М.М. Боброва, О.И. Агапова, М.С. Котлярова, А.Ю. Архипова, М.М. Мойсенович, И.И. Агапов. Совр. техн. мед., 7 (3), 6 (2015)
  13. L.D. Koh, Y. Cheng, C.P. Teng, Y.W. Khin, X.J. Loh, S.Y. Tee, M. Low, E. Ye, H.D. Yu, Y.W. Zhang, M.Y. Han. Prog. Pol. Sci., 46, 86 (2015)
  14. Y. Qi, H. Wang, K. Wei, Y. Yang, R.Y. Zheng, I.S. Kim, K.Q. Zhang. Int. J. Mol. Sci., 18 (237), (2017). DOI: 10.3390/ijms18030237
  15. J.H. Kim, C.H. Park, O.J. Lee, J.M. Lee, J.W. Kim, Y.H. Park, C.S. Ki. J. Biomed. Mater. Res. Part A., 100 (A), 3287 (2012). DOI: 10.1002/jbm.a.34274
  16. L. Jeong, K.Y. Lee, J.W. Liu, W.H. Park. Int. J. Biol. Macromol., 38, 140 (2006). DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2006.02.009
  17. D. Terada, Y. Yokoyama, S. Hattori, H. Kobayashi, Y. Tamada. Mater. Sci. Eng., 58, 119 (2016). DOI: 10.1016/j.msec.2015.07.041
  18. K. Yazawa, A.D. Malay, N. Ifuku, T. Ishii, H. Masunaga, T. Hikima, K. Numata. Biomacromolecules, 19 (6), 2227 (2018). DOI: 10.1021/acs.biomac.8b00232
  19. S. Kaewpirom. RSC Advances, 10 (27), 15913 (2020). DOI: 10.1039/D0RA02634D
  20. S.W. Ha, A.E. Tonelli, S.M. Hudson. Biomacromolecules, 6 (3), 1722 (2005). DOI: 10.1021/bm050010y
  21. G. Freddi, G. Pessina, M. Tsukada. Int. J. Biol. Macromol., 24 (2-3), 251 (1999). DOI: 10.1016/s0141-8130(98)00087-7
  22. L. Meinel, S. Hofmann, V. Karageorgiou, C. Kirker-Head, J. McCool, G. Gronowicz, L. Zichner, R. Langer, G. Vunjak-Novakovic, D.L. Kaplan. Biomaterials, 26 (2), 147 (2005). DOI: 10.1016/j.biomaterials.2004.02.047
  23. H. Weon, Y. Park. J. Appl. Pol. Sci., 82, 750 (2001). DOI: 10.1002/app.1901
  24. Q. Lu, X. Hu, X. Wang, J.A. Kluge, S. Lu, P. Cebe, D.L. Kaplan. Acta Biomater., 6, 1380 (2010). DOI: 10.1016/j.actbio.2009.10.041
  25. I.C. Um, H. Kweon, Y.H. Park, S. Hudson. Int. J. Biol. Macromol., 29, 91 (2001). DOI: 10.1016/s0141-8130(01)00159-3
  26. Q. Lu, X. Hu, X. Wang, J.A. Kluge, S. Lu, P. Cebe, D.L. Kaplan. Acta Biomater., 6 (4), 1380 (2010). DOI: 10.1016/j.actbio.2009.10.041
  27. A. Sagnella, A. Pistone, S. Bonetti, A. Donnadio, E. Saracino, M. Nocchetti, C. Dionigi, G. Ruani, M. Muccini, T. Posati, V. Benfenati, R. Zambonid. RSC Adv., 6, 9304 (2016)
  28. X. Hu, D.L. Kaplan, P. Cebe. Macromolecules., 3 (9), 6161 (2006). DOI: 10.1021/ma0610109
  29. Л.А. Сафонова, М.М. Боброва, О.И. Агапова, М.С. Котлярова, А.Ю. Архипова, М.М. Мойсенович, И.И. Агапов. Совр. техн. мед., 7 (3), 6 (2015)
  30. H. Kweon, H.C. Ha, I.C. Um, Y.H. Park. J. Appl. Pol. Sci., 80, 928 (2001). DOI: 10.1002/app.1172
  31. J. Gatesy, C. Hayashi, D. Motriuk, J. Woods, R. Lewis. Science, 291 (5513), 2603 (2001). DOI: 10.1126/science.1057561
  32. C. Fu, D. Porter, Z. Shao. Macromolecules., 42 (20), 7877 (2009). DOI: 10.1021/ma901321k
  33. Y. Cheng, L.-D. Koh, D. Li, B. Ji, M.-Y. Han, Y.-W. Zhang. J. R. Soc. Interface, 11 (96), 20140305 (2014). DOI: 10.1098/rsif.2014.0305
  34. C.Z. Zhou, F. Confalonieri, M. Jacquet, R. Perasso, Z.G. Li, J. Janin. Bioinform., 44 (2), 119 (2001). DOI: 10.1002/prot.1078
  35. M. Cetinkaya, S. Xiao, B. Markert, W. Stacklies, F. Grater. Biophys. J., 100 (5), 1298 (2011). DOI: 10.1016/j.bpj.2010.12.3712
  36. K. Yazawa, K. Ishida, H. Masunaga, T. Hikima, K. Numata. Biomacromolecules, 17 (3), 1057 (2016). DOI: 10.1021/acs.biomac.5b01685
  37. N. Joharia, L. Moroni, A. Samadikuchaksaraei. Eur. Pol. J., 134, (2020). 109842. DOI: 10.1016/j.eurpolymj.2020.109842

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.