Вышедшие номера
Плазмонные наночастицы золота и серебра для создания биоинтерфейсов
Министерство науки и высшего образования Российской Федерации, Крупный научный проект, Соглашение № 075-15-2024-555 от 25 апреля 2024 года
Курилова У.Е.1,2, Новиков Д.В.3, Чумаченко Ю.В.3, Тарасов А.М.3, Дубков С.В.3, Громов Д.Г.3, Суетина И.А.4, Руссу Л.И.4, Мезенцева М.В.4, Герасименко А.Ю.1,2
1Институт бионических технологий и инжиниринга, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации, 119991, Москва, Россия
2Институт биомедицинских систем, Национальный исследовательский университет "МИЭТ", 124498, Москва, Зеленоград, Россия
3Институт перспективных материалов и технологий, Национальный исследовательский университет "МИЭТ", 124498, Москва, Зеленоград, Россия
4Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного акад. Н.Ф. Гамалеи Министерства здравоохранения Российской Федерации, 123098, Москва, Россия
Email: kurilova_10@mail.ru
Поступила в редакцию: 19 декабря 2025 г.
В окончательной редакции: 19 декабря 2025 г.
Принята к печати: 19 декабря 2025 г.
Выставление онлайн: 2 апреля 2026 г.

Представлены результаты исследований массивов наночастиц золота и серебра, иммобилизованных на кремниевой подложке, с целью выявления возможности их использования для создания биоинтерфейсов, активируемых оптическим излучением. Наночастицы сформированы методами вакуум-термического испарения и быстрого термического отжига. Варьирование толщины исходных пленок в диапазоне от 5 до 100 nm и температуры отжига позволило получить массивы наночастиц с различной морфологией. Исследованы количественные параметры клеточного ответа - число клеток, общая площадь, занимаемая клетками, и средний размер отдельной клетки, а также распределение клеток и их морфология на поверхности подложки с наночастицами после их инкубации в течение 48 h. Наиболее высокая клеточная активность наблюдалась на золотых наночастицах, полученных из пленок толщиной 5 и 10 nm, а также на серебряных наночастицах толщиной пленок 5 nm. Ключевые слова: плазмонный резонанс, вакуум-термическое испарение, быстрый термический отжиг, биосовместимость, стимуляция.
  1. R. Boni, A. Ali, A. Shavandi, A.N. Clarkson. J. Biomed. Sci., 25 (1), 90 (2018). DOI: 10.1186/s12929-018-0491-8
  2. Y.-S. Borghei, S. Hosseinkhani, M.R. Ganjali. J. Adv. Res., 39, 61 (2022). DOI: 10.1016/j.jare.2021.11.006
  3. S. Cherevko, C.-H. Chung. Electrochem. Commun., 13 (1), 16 (2011). DOI: 10.1016/j.elecom.2010.11.001
  4. G.P. Chuy, B.P. Savi, C.P. Pavi, G.A. Filipe, D. Robl, G. Fongaro, W.L. da Silva, F.A. Ferreira. Bio Nano Sci., 15 (3), 380 (2025). DOI: 10.1007/s12668-025-02005-2
  5. L. Colloca, T. Ludman, D. Bouhassira, R. Baron, A.H. Dickenson, D. Yarnitsky, R. Freeman, A. Truini, N. Attal, N.B. Finnerup, Ch. Eccleston, E. Kalso, D.L. Bennett, R.H. Dworkin, S.N. Raja. Nat. Rev. Dis. Primers, 3 (1), 17002 (2017). DOI: 10.1038/nrdp.2017.2
  6. M.J. Dalby, N. Gadegaard, R. Tare, A. Andar, M.O. Riehle, P. Herzyk, Ch.D.W. Wilkinson, R.O.C. Oreffo. Nat. Mater., 6 (12), 997 (2007). DOI: 10.1038/nmat2013
  7. L.R. Doblado, C. Martinez-Ramos, M.M. Pradas. Front. Nanotechnol., 3, 643507 (2021). DOI: 10.3389/fnano.2021.643507
  8. I. Egry, E. Ricci, R. Novakovic, S. Ozawa. Adv. Colloid Interface Sci., 159 (2), 198 (2010). DOI: 10.1016/j.cis.2010.06.009
  9. Z. Fekete, A.C. Horvath, A. Zatonyi. J. Neural Eng., 17 (5), 051003 (2020). DOI: 10.1088/1741-2552/abb3b2
  10. W. Huang, V. Rajendran, M. Chan, M. Hsiao, H. Chang, R. Liu. Adv. Opt. Mater., 11 (11), 2202061 (2023). DOI: 10.1002/adom.202202061
  11. I. Ielo, G. Rando, F. Giacobello, S. Sfameni, A. Castellano, M. Galletta, D. Drommi, G. Rosace, M. R. Plutino. Molecules, 26 (19), 5823 (2021). DOI: 10.3390/molecules26195823
  12. L. Dykman, N. Khlebtsov. Chem. Soc. Rev., 41, 2256 (2012). DOI: 10.1039/c1cs15166e
  13. S. Siddique, J.C.L. Chow. Appl. Sci., 10 (11), 3824 (2020). DOI: 10.3390/app10113824
  14. P. Si, N. Razmi, O. Nur, S. Solanki, C.M. Pandey, R.K. Gupta, B.D. Malhotra, M. Willander, A. de la Zerda. Nanoscale Adv., 3, 2679 (2021). DOI: 10.1039/D0NA00961J
  15. A.-C. Burdusel, O. Gherasim, A.M. Grumezescu, L. Mogoanta, A. Ficai, E. Andronescu. Nanomaterials, 8 (9), 681 (2018). DOI: 10.3390/nano8090681
  16. S.S.D. Kumar, N.K. Rajendran, N.N. Houreld, H. Abrahamse. Int. J. Biol. Macromol., 115, 165 (2018). DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2018.04.003
  17. D. Mahl, J. Diendorf, S. Ristig, C. Greulich, Z.-A. Li, M. Farle, M. Koller, M. Epple. J. Nanoparticle Res., 14 (10), 1153 (2012). DOI: 10.1007/s11051-012-1153-5
  18. J.R. Kadhim, E.H. Karsh, Z.J. Taqi, M.S. Jabir. Mater. Today: Proc., 42 (5), 3041 (2021). DOI: 10.1016/j.matpr.2020.12.826
  19. N.R.S. Sibuyi, K.L. Moabelo, A.O. Fadaka, S. Meyer, M.O. Onani, A.M. Madiehe, M. Meyer. Nanoscale Res. Lett., 16, 174 (2021). DOI: 10.1186/s11671-021-03632-w
  20. A.H. Hashem, A.M. Shehabeldine, O.M. Ali, S.S. Salem. Polymers, 14 (11), 2293 (2022). DOI: 10.3390/polym14112293
  21. D.S. Ipe, P.T.S. Kumar, R.M. Love, S.M. Hamlet. Front. Microbiol., 11, 1074 (2020). DOI: 10.3389/fmicb.2020.01074
  22. J. Zhang, L. Mou, X. Jiang. Chem. Sci., 11, 923 (2020). DOI: 10.1039/C9SC06497D
  23. А.М. Тарасов, Д.В. Новиков, Д.В. Горелов, С.С. Генералов, В.В. Амеличев. Фотоника, 17 (6), 488 (2023). DOI: 10.22184/1993-7296.FRos.2023.17.6.488.496
  24. Y. Huang, X. Lu, R. Chen, Y. Chen. Regen. Biomater., 7 (2), 221 (2020). DOI: 10.1093/rb/rbz051
  25. V.S. LeBleu, E.G. Neilson. FASEB J., 34 (3), 3519 (2020). DOI: 10.1096/fj.201903188R
  26. S. Lee, P.E. Phelan, R.A. Taylor, R. Prasher, L. Dai. J. Heat Transfer, 138 (5), 051101 (2016). DOI: 10.1115/1.4032310
  27. N.S.S. Mousavi, K.B. Ramadi, Y.-A. Song, S. Kumar. Commun. Mater., 4 (1), 101 (2023). DOI: 10.1038/s43246-023-00429-5
  28. R.T. Richardson, M.R. Ibbotson, A.C. Thompson, A.K. Wise, J.B. Fallon. Healthc. Technol. Lett., 7 (3), 58 (2020). DOI: 10.1049/htl.2019.0114
  29. N. Sarfraz, I. Khan. Chem. Asian J., 16 (7), 720 (2021). DOI: 10.1002/asia.202001202
  30. J. Silver, J.H. Miller. Nat. Rev. Neurosci., 5 (2), 146 (2004). DOI: 10.1038/nrn1326
  31. A. Ranella, M. Barberoglou, S. Bakogianni, C. Fotakis, E. Stratakis. Acta Biomater., 6 (7), 2711 (2010). DOI: 10.1016/j.actbio.2010.01.016
  32. S. Cai, C. Wu, W. Yang, W. Liang, H. Yu, L. Liu. Nanotechnol. Rev., 9 (1), 971 (2020). DOI: 10.1515/ntrev-2020-0076
  33. J. Nurkovic, I. Zaletel, S. Nurkovic, vS. Hajrovic, F. Mustafic, J. Isma, A. Jurivsic vSkevin, V. Grbovic, M. Kovavcevic Filipovic, Z. Dolicanin. Lasers Med. Sci., 32, 151 (2017). DOI: 10.1007/s10103-016-2097-2
  34. J. Li, J. Liu, C. Chen. ACS Nano, 11 (3), 2403 (2017). DOI: 10.1021/acsnano.7b01200
  35. P. Bazard, R.D. Frisina, J.P. Walton, V.R. Bhethanabotla. Sci. Rep., 7, 7803 (2017). DOI: 10.1038/s41598-017-08141-4
  36. M. Kim, J.-H. Lee, J.-M. Nam. Adv. Sci., 6, 1900471 (2019). DOI: 10.1002/advs.201900471
  37. M. Tian, Y. Ma, W. Lin. Acc. Chem. Res., 52 (8), 2147 (2019). DOI: 10.1021/acs.accounts.9b00289