Исследование транспорта эритроцитов через микроканалы при индукции окислительного стресса трет-бутилпероксидом
Российский фонд фундаментальных исследований (РФФИ), Стабильность, 20-34-70111
Скверчинская Е.А.
1, Тапинова О.Д.
2, Филатов Н.А.
2, Беседина Н.А.
2, Миндукшев И.В.
1, Букатин А.С.
2,31Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН, Санкт-Петербург, Россия
2Санкт-Петербургский национальный исследовательский Академический университет имени Ж.И. Алфёрова Российской академии наук, Санкт-Петербург, Россия
3Институт аналитического приборостроения Российской академии наук, Санкт-Петербург, Россия
Email: olgatapinova@gmail.com, antbuk.fiztek@gmail.com
Поступила в редакцию: 15 декабря 2019 г.
В окончательной редакции: 15 декабря 2019 г.
Принята к печати: 17 февраля 2020 г.
Выставление онлайн: 21 мая 2020 г.
Для характеристики влияния окислительного стресса (ОС) на способность эритроцитов проходить микрососуды и капилляры было проведено исследование динамики движения эритроцитов человека в каналах микрофлюидного устройства при действии индуктора ОС трет-бутилгидропероксида (tBH), in vitro, и сопоставлено с цитологической оценкой трансформации мембран клеток. При ОС нарушался контроль формы и объема клеток, скорость прохода снижалась, и наблюдались окклюзии микроканалов. Разработанный микрофлюидный чип обеспечивал оценку микрореологии эритроцитов при действии гидроперекиси. В дальнейшем возможно применение микрофлюидного анализа эритроцитов у пациентов для оценки микрореологии при действии ксенобиотиков. Ключевые слова: микрофлюидное устройство, эритроциты, деформируемость, оксидативный стресс, трансформация мембраны.
- Huisjes R., Bogdanova A., van Solinge W., Schiffelers R.M., Kaestner L., van Wijk R. // Front Physiol. 2018. Vol. 9. P. 656. Review. DOI: 10.3389/fphys.2018.00656. eCollection 2018
- Mohandas N., Gallagher P.G. // Blood. 2008. Vol. 112. P. 3939-3948
- Svetina S. // Cell Mol. Biol. Lett. 2012. Vol. 17. P. 171-181. DOI: 10.2478/s11658-012-0001-z
- Franco T., Chu H., Low P.S. // Biochem. J. 2016. Vol. 473. P. 3147-3158. DOI: 10.1042/BCJ20160328
- Takakuwa Y. // Curr. Opin. Hematol. 2001. Vol. 8. P. 80-84. Review. PubMed PMID: 11224681
- Arashiki N., Kimata N., Manno S., Mohandas N., Takakuwa Y. // Biochem. 2013. Vol. 52. P. 5760-5969. DOI: 10.1021/bi400405p
- Pivkin I.V., Peng Zh., Karniadakis G.E., Buffet P.A., Dao M., Subra Suresh // PNAS. 2016. Vol. 113. P. 7804-7809. DOI: org/10.1073/pnas.1606751113
- Tomaiuolo G. // Biomicrofluidics. 2014. Vol. 8. P. 051501. DOI: 10.1063/1.4895755. eCollection 2014 Sep. Review
- Losserand S., Coupier G., Podgorski T. // Microvasc Res. 2019. Vol. 124. P. 30-36. DOI: 10.1016/j.mvr.2019.02.003
- Barshtein G., Ben-Ami R., Yedgar S. // Expert Rev. Cardiovasc Ther. 2007. Vol. 5. P. 743- 752. PubMed PMID: 17605652
- Nagababu E., Mohanty J.G., Friedman J.S., Rifkind J.M. // Free Radic. Res. 2013. Vol. 47. P. 164-171. DOI: 10.3109/10715762.2012.756138
- Миндукшев И.В., Судницына Ю.С., Скверчинская Е.А., Андреева А.Ю., Добрылко И.А., Сенченкова Е.Ю., Кривченко А.И., Гамбарян С.П. // Биол. мембр. 2019. Т. 36. Вып. 5. С. 358-372. DOI: 10.1134/S0233475519050086
- Domanski A.V., Lapshina E.A., Zavodnik I.B. // Biochem. (Mosc). 2005. Vol. 70. P. 761-9. PubMed PMID: 16097939
- Boas L.V., Faustino V., Lima R., Miranda J.M., Minas G., Fernandes C., Catarino S.O. // Micromachines (Basel). 2018. Vol. 9. P. 384. DOI: 10.3390/mi9080384
- Hou H.W., Bhagat A.A., Chong A.G., Mao P., Tan K.S., Han J., Lim C.T. // Lab. Chip. 2010. Vol. 10. P. 2605-2613. DOI: 10.1039/c003873c
- Cluitmans J.C., Chokkalingam V., Janssen A.M., Brock R., Huck W.T.S., Bosman G.J.C.G.M. // Biomed. Res. Int. 2014. Vol. 2014. P. 764268. DOI: 10.1155/2014/764268
- Chien W., Zhang Z., Gompper G., Fedosov D.A. // Biomicrofluidics. 2019. Vol. 13. P. 044106. DOI: 10.1063/1.5112033.eCollection 2019
- Букатин А.С., Мухин И.С., Малышев Е.И., Кухтевич И.В., Евстрапов А.А., Дубина М.В. // ЖТФ. 2016. Т. 86. Вып. 10. С. 125-130. [ Bukatin A.S., Mukhin I.S., Malyshev E.I. Kukhtevich I.V., Evstrapov A.A., Dubina M.V. // Tech. Phys. 2016. Vol. 61. P. 1566-1571. DOI: 10.1134/S106378421610008X]
- Chia-Hung D.T., Shinya S., Fumihito A., Tatsunori Taniguchi, Tomohito Ohtani, Yasushi Sakatac, Makoto Kanekoa // RSC Adv. 2014. Vol. 4. P. 45050-45058. DOI: org/10.1039/C4RA08276A
- Gurov I., Volkov M., Margaryants N., Pimenov A., Potemkin A. // Opt. Lasers in Eng. 2018. Vol. 104. P. 244-251. DOI: org/10.1016/j.optlasering.2017.09.003
- Huang S., Hou H.W., Kanias T., Sertorio J.T., Chen H., Sinchar D., Gladwin M.T., Han J. // Lab. Chip. 2015. Vol. 15. P. 448-458. pmid:25406942
- Jeong J.H., Sugii Y., Minamiyama M., Okamoto K. // Microvasc Res. 2006. Vol. 71. P. 212-217. PubMed PMID: 16624342
- Pretorius E., Kell D.B. // Integr. Biol. (Camb). 2014. Vol. 6. P. 486-510. DOI: 10.1039/c4ib00025k
- Welbourn E.M., Wilson M.T., Yusof A., Metodiev M.V., Cooper C.E. // Free Radic. Biol. Med. 2017. Vol. 103. P. 95-106. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2016.12.024
- Chu H., Mc Kenna M.M., Krump N.A., Zheng S., Mendelsohn L., Thein S.L., Garrett L.J., Bodine D.M., Low .PS. // Blood. 2016. Vol. 128. P. 2708-2716. DOI: 10.1182/blood-2016-01-692079
- Kwan J.M., Guo Q., Kyluik-Price D.L., Ma H., Scott M.D. // Am. J. Hematol. 2013. Vol. 88. P. 682-689. DOI: 10.1002/ajh.23476
- Sinha A., Chu T.T.T., Dao M., Chandramohanadas R. // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. P. 9768. DOI: 10.1038/srep09768
Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.
Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.
