Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2026, выпуск 6 » Статья стр. 626
<<<>>>
Сапфировые капилляры для лазерного облучения естественных каналов биологических тканей
Государственное задание , Минобрнауки России для ИФТТ РАН
Шикунова И.А. 1, Курлов В.Н. 1, Шикунов С.Л. 1, Стрюков Д.О. 1, Долганова И.Н.1
1Институт физики твердого тела имени Ю.А. Осипьяна Российской академии наук (ИФТТ РАН), Черноголовка, Россия
Email: sh_irina@issp.ac.ru, kurlov@issp.ac.ru, shikunov@issp.ac.ru
Поступила в редакцию: 1 декабря 2025 г.
В окончательной редакции: 24 декабря 2025 г.
Принята к печати: 27 марта 2026 г.
Выставление онлайн: 25 июня 2026 г.
PDF версия
Рассмотрен новый тип специального световода, позволяющего проводить контактную и неконтактную коагуляцию стенки каналов биотканей с различной длиной участка деструкции с использованием для доставки излучения стандартных торцевых оптических волокон. Путем моделирования показана возможность формирования различных индикатрис направленности выходных пучков для конусной и сферической выемки на торце облучателя. Методами профилированного роста получены сапфировые капиллярные насадки с осевыми полостями в качестве отражающих элементов. Экспериментально показана коагуляция сосудов печени при 30-секундной экспозиции лазерного излучения мощностью до 10 W с длиной волны 1.064 μm. Облучатели с сапфировыми насадками обладают высокой надежностью, воспроизведением формы светового поля, простотой конструкции и выровненным тепловым профилем в процессе фототермического воздействия. Ключевые слова: профилированные кристаллы сапфира, метод EFG/Степанова, волоконно-оптические инструменты, лазер-индуцированная термотерапия, лазерная абляция вен.
  1. R. Zipper, G. Lamvu. J. Comp. Eff. Res., 11 (11), 843 (2022). DOI: 10.2217/cer-2021-0281
  2. M. Gambacciani, S. Palacios. Maturitas, 99, 10 (2017). DOI: 10.1016/j.maturitas.2017.01.012
  3. C. Orgain, V. Rothholtz, B.J.F. Wong. Lasers in Dermatology and Medicine, ed. by K. Nouri (Springer, Cham, 2018), ch. 5. DOI: 10.1007/978-3-319-76220-3_5
  4. C. Zhang, W. Lyu, P. Qiu, C. Zhang, X. Zhao, X. Wang, B. He, B. Fu, X. Ji. Lasers Med. Sci., 39 (1), 18 (2023). DOI: 10.1007/s10103-023-03964-2
  5. M. Venermo, J. Saarinen, E. Eskelinen, S. Vahaaho, E. Saarinen, M. Railo, I. Uurto, J. Salenius, A. Alback. Br. J. Surg., 103 (11), 1438 (2016). DOI: 10.1002/bjs.10260
  6. L. Sachelarie, R. Cristea, E. Burlui, L.L. Hurjui. Dent. J. (Basel), 12 (12), 420 (2024). DOI: 10.3390/dj12120420
  7. C.A. Cowpland, A.L. Cleese, M.S. Whiteley. Phlebology, 32 (5), 299 (2016). DOI: 10.1177/0268355516648067
  8. I. Golbasi, C. Turkay, O. Erbasan, C. Kemaloglu, S. Sanli, M. Turkay, O. Bayezid. Lasers Med. Sci., 30, 103 (2015). DOI: 10.1007/s10103-014-1626-0
  9. N.Yu. Ignatieva, O.L. Zakharkina, C.V. Masayshvili, S.V. Maximov, V.N. Bagratashvili, V.V. Lunin. Lasers Med. Sci., 32, 1105 (2017). DOI: 10.1007/s10103-017-2214-x
  10. S.S. Srivatsa, S. Chung, V. Sidhu. J. Vasc. Surg. Venous Lymphat. Disord., 7 (1), 90 (2019). DOI: 10.1016/j.jvsv.2018.07.018
  11. L. Navarro, R.J. Min, C. Bone. Dermatol. Surg., 27 (2), 117 (2001). DOI: 10.1046/j.1524-4725.2001.00134.x
  12. T. Stokbroekx, A. de Boer, R.M. Verdaasdonk, M.E. Vuylsteke, S.R. Mordon. Lasers Med. Sci., 29, 501 (2014). DOI: 10.1007/s10103-013-1475-2
  13. В. Нойбергер. Патент РФ 2506921 C2 20.02.2014. Опубл. Бюл. N5
  14. M.E. Vuylsteke, S. Thomis, P. Mahieu, S. Mordon, I. Fourneau. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg., 44 (6), 587 (2012). DOI: 10.1016/j.ejvs.2012.09.003
  15. A. Cavallini, D. Marcer, S.F. Ruffino. Ann. Vasc. Surg., 28 (3), 686 (2014). DOI: 10.1016/j.avsg.2013.06.033
  16. V.G. Truong, V.N. Tran, J. Hwang, H.W. Kang. Biomed. Opt. Express, 9 (7), 3037 (2018). DOI: 10.1364/BOE.9.003037
  17. M. Ahn, Y.G. Chae, J. Hwang, Y.C. Ahn, H.W. Kang. J. Biophotonics, 10 (8), 997 (2017). DOI: 10.1002/jbio.201500331
  18. B.C. Disselhoff, A.I. Rem, R.M. Verdaasdonk, D.J. Kinderen, F.L. Moll. Phlebology, 23 (2), 69 (2008). DOI: 10.1258/phleb.2007.007038
  19. T.M. Proebstle, H.A. Lehr, A. Kargl, C. Espinola-Klein, W. Rother, S. Bethge, J. Knop. J. Vasc. Surg., 35 (4), 729 (2002). DOI: 10.1067/mva.2002.121132
  20. G.M. Katyba, K.I. Zaytsev, I.N. Dolganova, I.A. Shikunova, N.V. Chernomyrdin, S.O. Yurchenko, G.A. Komandin, I.V. Reshetov, V.V. Nesvizhevsky, V.N. Kurlov. Prog. Cryst. Growth Charact. Mater., 64 (4), 133 (2018). DOI: 10.1016/j.pcrysgrow.2018.10.002
  21. I.A. Shikunova, D.O. Stryukov, Yu.N. Zubareva, A.S. Kucheryavenko, V.N. Kurlov, I.N. Dolganova. J. Biomed. Photonics Eng., 10 (4), 40315 (2024). DOI: 10.18287/JBPE24.10.040315
  22. I.N. Dolganova, I.A. Shikunova, A.K. Zotov, M.A. Shchedrina, I.V. Reshetov, K.I. Zaytsev, V.V. Tuchin, V.N. Kurlov. J. Biophotonics, 13 (10), e202000164 (2020). DOI: 10.1002/jbio.202000164
  23. I.N. Dolganova, I.A. Shikunova, G.M. Katyba, A.K. Zotov, E.E. Mukhina, M.A. Shchedrina, V.V. Tuchin, K.I. Zaytsev, V.N. Kurlov. J. Biomed. Opt., 24 (12), 128001 (2019). DOI: 10.1117/1.JBO.24.12.128001
  24. H.E. LaBelle, Jr. J. Cryst. Growth, 50, 8 (1980). DOI: 10.1016/0022-0248(80)90226-2
  25. P.I. Antonov, V.N. Kurlov. Crystallography Reports, 47, Suppl. 1, S43 (2002). DOI: 10.1134/1.1529958
  26. В.А. Бородин, Т.А. Стериополо, В.А. Татарченко. Рост кристаллов (Наука, М., 1986), т.15, с. 170
  27. V.N. Kurlov. J. Cryst. Growth, 179, 168 (1997). DOI: 10.1016/S0022-0248(97)00110-3
  28. W.S.J. Malskat, A.A. Poluektova, W.M. Van Der Geld, H.A.M. Neumann, R.A. Weiss, C.M.A. Bruijninckx, M.J.C. van Gemert. Las. in Med. Sci., 29 (2), 393 (2013). DOI: 10.1007/s10103-013-1480-5

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2026 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme