Вышедшие номера
Флуоресцентная микроскопия как источник автоматических аннотаций для обучения нейросетевых моделей сегментации клеток в светлопольной микроскопии
Министерство науки и высшего образования Российской Федерации, на основе госзадания, Управляемый ангиогенез: коллективная клеточная динамика и новые физические методы воздействия, 0705-2025-0010
Швецов А.И. 1, Колотьева Н.А.1
1Московский государственный технический университет им. Н.Э. Баумана, Москва, Россия
Email: shvetsov.anton@mail.ru
Выставление онлайн: 8 июня 2026 г.

Представлен программный подход к автоматизированной сегментации клеток церебрального эндотелия на светлопольных изображениях с использованием архитектуры глубокого обучения YOLOv11. Аннотация обучающего датасета формируется на основе флуоресцентных изображений, обработанных методами классического компьютерного зрения. Разработанный алгоритм обеспечивает выделение ядер эндотелиальных клеток микрососудов головного мозга и исключение областей, соответствующих макрофагам, что уменьшает количество ложноположительных детекций. Сформированные бинарные маски используются для автоматической генерации аннотаций, необходимых для обучения нейросетевой модели. Предложенный метод потенциально применим ко всем типам клеток, поддающимся флуоресцентному окрашиванию, и позволяет автоматизировать процесс подготовки данных и анализа клеточных изображений, полученных методом светлопольной микроскопии, что расширяет возможности неинвазивных исследований в области оптической биофотоники. Ключевые слова: флуоресцентная микроскопия, светлопольная микроскопия, машинное обучение, компьютерное зрение, сегментация изображений, эндотелиоциты, оптическая биофотоника.
  1. E. Trimm, K. Red-Horse. Nat. Rev. Cardiol., 20, 197-210 (2023). DOI: 10.1038/s41569-022-00770-1
  2. H.G. Augustin, G.Y. Koh. Cell, 187 (18), 4833-4858 (2024). DOI: 10.1016/j.cell.2024.07.012
  3. M.J. Workman, C.N. Svendsen. Fluids Barriers CNS, 17 (1), 30 (2020). DOI: 10.1186/s12987-020-00191-7
  4. J.J. Jamieson, P.C. Searson, S. Gerecht. J. Biol. Eng., 11 (1), 37 (2017). DOI: 10.1186/s13036-017-0076-1
  5. P. Carmeliet, R.K. Jain. Nature, 473, 298-307 (2011). DOI: 10.1038/nature10144
  6. J. Icha, M. Weber, J.C. Waters, C. Norden. BioEssays, 39 (8) (2017). DOI: 10.1002/bies.201700003
  7. M.K. Daddysman, M.A. Tycon, C.J. Fecko. Methods Mol. Biol., 1148, 1-17 (2014). DOI: 10.1007/978-1-4939-0470-9_1
  8. K. Nurzynska. Symmetry, 10 (3), 60 (2018). DOI: 10.3390/sym10030060
  9. M.A.S. Ali, O. Misko, S.-O. Salumaa, M. Papkov, K. Palo, D. Fishman, L. Parts. SLAS Discov., 26 (9), 1125-1137 (2021). DOI: 10.1177/24725552211023214
  10. A. Ghaznavi, R. Rychtarikova, M. Saberioon, D. vStys. Comput. Biol. Med., 147, 105805 (2022). DOI: 10.1016/j.compbiomed.2022.105805
  11. R. Karmakar, S.V. Nooshabadi, A.O. Eghrari. Cornea, 42 (4), 456-463 (2023). DOI: 10.1097/ICO.0000000000003186
  12. N. Joseph, I. Marshall, E. Fitzpatrick, H.J. Menegay, J.H. Lass, B.A.M. Benetz, D.L. Wilson. J. Med. Imaging, 11 (1), 014006 (2024). DOI: 10.1117/1.JMI.11.1.014006
  13. Y. Liu, Q. Xue, Q. Tang, M. Hou, H. Qi, G. Chen, W. Chen, J. Zhang, Y. Chen, X. Xu. Microvasc. Res., 90, 199-205 (2013). DOI: 10.1016/j.mvr.2013.08.004
  14. М.Р. Капкаева, А.Б. Салмина, Е.Д. Хилажева, Д.Н. Воронков. Способ выделения эндотелия микрососудов мозга крысы. Патент RU 2774603 C1 (2022)
  15. Ю.А. Успенская, А.В. Моргун, Е.Д. Осипова и др. Успехи физиол. наук, 52 (2), 39-50 (2021). DOI: 10.31857/S0301179821020090
  16. Ultralytics. YOLOv11 Documentation [Электронный ресурс]. URL: https://docs.ultralytics.com/models/yolov11/

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.