Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2024, выпуск 3 » Статья стр. 254
<<<>>>
Оптическая визуализация комбинированных флуоресцентных клеточных сфероидов и исследование их роста при воздействии химиопрепарата
Российский научный фонд (РНФ), Проведение исследований научными лабораториями мирового уровня в рамках реализации приоритетов научно-технологического развития Российской Федерации, 21-74-30016
Согомонян А.С. 1,2, Котельникова П.А. 1, Дёмин Д.Э. 3, Миркасымов А.Б. 1,4, Деев С.М. 1,4,5, Звягин А.В. 1,4,6
1Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН, Москва, Россия
2Инженерно-физический институт биомедицины (ИФИБ), Национальный исследовательский ядерный университет (МИФИ), Москва, Россия
3Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН, Москва, Россия
4Институт молекулярной тераностики, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова, Москва, Россия
5Институт фундаментальной медицины и биологии, Казанский федеральный университет, Казань, Россия
6MQ Photonics Centre, Macquarie University, Сидней, Австралия
Email: annasogomonyan2012@mail.ru, polina.kotelnikova27@gmail.com, denisdeminbio@gmail.com, mirkasymov@phystech.edu, biomem@mail.ru, andrei.zvyagin@mq.edu.au
Поступила в редакцию: 11 декабря 2023 г.
В окончательной редакции: 19 января 2024 г.
Принята к печати: 5 марта 2024 г.
Выставление онлайн: 31 мая 2024 г.
PDF версия
Разработка новых препаратов для лечения рака требует более глубокого понимания механизмов канцерогенеза и их более точного воспроизведения. Создание трехмерных клеточных моделей стало важным шагом в исследовании опухолевой стромы и воссоздании релевантной модели рака. С применением 3D-печати и микромолдинга мы получили полимерные молды для быстрого формирования клеточных сфероидов, их длительной инкубации и микроскопии. Формы были использованы для создания сфероидов раковых и стромальных клеток и их комбинаций. Для того чтобы различать опухолевые и стромальные клетки при сокультивации, они были трансдуцированы генами флуоресцентных белков в разных областях видимого спектра. Флуоресцентная микроскопия позволила не только наблюдать за динамикой роста сфероидов, но и оценивать отдельно чувствительность раковых и стромальных клеток к терапии цитостатиком. Разработанная форма упрощает воссоздание релевантной трехмерной модели рака и тестирование цитотоксических препаратов, а полученные результаты демонстрируют важность оптических методов в исследовании противоопухолевой эффективности лекарств. Ключевые слова: 3D-печать, мультиклеточные опухолевые сфероиды, флуоресцентная микроскопия, цисплатин, химиотерапия.
  1. H. Zahreddine, K.L.B. Borden. Front. Pharmacol., 4, 28 (2013). DOI: 10.3389/fphar.2013.00028
  2. P. Pellegrini, J.T. Serviss, T. Lundback, N. Bancaro, M. Mazurkiewicz, I. Kolosenko, Di Yu, M. Haraldsson, P. D'Arcy, S. Linder, A. de Milito. Cancer Cell Int., 18, 147 (2018). DOI: 10.1186/s12935-018-0645-5
  3. V.O. Shipunova, M.M. Belova, P.A. Kotelnikova, O.N. Shilova, A.B. Mirkasymov, N.V. Danilova, E.N. Komedchikova, R. Popovtzer, S.M. Deyev, M.P. Nikitin. Pharmaceutics, 14, 5 (2022). DOI: 10.3390/pharmaceutics14051013
  4. G. Blandino, F. Lo Sardo. J. Thorac. Dis., 11 ( Suppl 3), S461--S464 (2019). DOI: 10.21037/jtd.2018.11.17
  5. G. Mehta, A.Y. Hsiao, M. Ingram, G.D. Luker, S. Takayama. J. Control. Release, 164 (2), 192--204 (2012). DOI: 10.1016/j.jconrel.2012.04.045
  6. S.J. Han, S. Kwon, K.S. Kim. Cancer Cell Int., 21 (1), 152 (2021). DOI: 10.1186/s12935-021-01853-8
  7. M. Kapa czynska, T. Kolenda, W. Przyby a, M. Zajaczkowska, A. Teresiak, V. Filas, M. Ibbs, R. Blizniak, . uczewski, K. Lamperska. Arch. Med. Sci., 14 (4), 910--919 (2018). DOI: 10.5114/aoms.2016.63743
  8. P.L. Olive, R.E. Durand. J. Natl. Cancer Inst., 84 (9), 707--711 (1992). DOI: 10.1093/jnci/84.9.707
  9. S.-H. Kim, H.-J. Kuh, C.R. Dass. Curr. Drug Discov. Technol., 8 (2), 102--106 (2011). DOI: 10.2174/157016311795563875
  10. Y.-S. Torisawa, A. Takagi, H. Shiku, T. Yasukawa, T. Matsue. Oncol. Rep., 13 (6), 1107--1112 (2005)
  11. R.M. Bremnes, T. D nnem, S. Al-Saad, K. Al-Shibli, S. Andersen, R. Sirera, C. Camps, I. Marinez, L.-T. Busund. J. Thorac. Oncol., 6 (1), 209--217 (2011). DOI: 10.1097/JTO.0b013e3181f8a1bd
  12. M.P. Shekhar, J. Werdell, S.J. Santner, R.J. Pauley, L. Tait. Cancer Res., 61 (4), 1320--1326 (2001)
  13. M. Upreti, A. Jamshidi-Parsian, N.A. Koonce, J.S. Webber, S.K. Sharma, A.A. Asea, M.J. Mader, R.J. Griffin. Transl. Oncol., 4 (6), 365--376 (2011). DOI: 10.1593/tlo.11187
  14. N.N. Khodarev, J. Yu, E. Labay, T. Darga, C.K. Brown, H.J. Mauceri, R. Yassari, N. Gupta, R.R. Weichselbaum. J. Cell Sci., 116 (6), 1013--1022 (2003). DOI: 10.1242/jcs.00281
  15. M.J. Bissell, D. Radisky. Nat. Rev. Cancer, 1 (1), 46--54 (2001). DOI: 10.1038/35094059
  16. W.-T. Dou, H.-H. Han, A.C. Sedgwick, G.-B. Zhu, Y. Zang, X.-R. Yang, J. Yoon, T.D. James, J. Li, X.-P. He. Sci. Bull. (Beijing), 67 (8), 853--878 (2022). DOI: 10.1016/j.scib.2022.01.014
  17. S. Bhaumik, J. Boyer, C. Banerjee, S. Clark, N. Sebastiao, E. Vela, P. Towne. J. Cell. Biochem., 121 (12), 4974--4990 (2020). DOI: 10.1002/jcb.29827
  18. A.S. Sogomonyan, V.O. Shipunova, V.D. Soloviev, V.I. Larionov, P.A. Kotelnikova, S.M. Deyev. Acta Naturae, 14 (1), 92--100 (2022). DOI: 10.32607/actanaturae.11603
  19. I. Smyrek, B. Mathew, S.C. Fischer, S.M. Lissek, S. Becker, E.H.K. Stelzer. Biol. Open, 8 (1) (2019). DOI: 10.1242/bio.037051
  20. M. Vinci, S. Gowan, F. Boxall, L. Patterson, M. Zimmermann, W. Court, C. Lomas, M. Mendiola, D. Hardisson, S.A. Eccles. BMC Biol., 10, 29 (2012). DOI: 10.1186/1741-7007-10-29
  21. Y.L. Huang, C. Shiau, C. Wu, J.E. Segall, M. Wu. Biophys. Rev. Lett., 15 (3), 131--141 (2020). DOI: 10.1142/s1793048020500034
  22. V.O. Shipunova, V.L. Kovalenko, P.A. Kotelnikova, A.S. Sogomonyan, O.N. Shilova, E.N. Komedchikova, A.V. Zvyagin, M.P. Nikitin, S.M. Deyev. Pharmaceutics, 14 (1), (2021). DOI: 10.3390/pharmaceutics14010043
  23. E.C. Costa, V.M. Gaspar, P. Coutinho, I.J. Correia. Biotechnol. Bioeng., 111 (8), 1672--1685 (2014). DOI: 10.1002/bit.25210
  24. S. Dasari, P.B. Tchounwou. Eur. J. Pharmacol., 740, 364--378 (2014). DOI: 10.1016/j.ejphar.2014.07.025
  25. M.R. Muller, K.A. Wright, P.R. Twentyman. Cancer Chemother. Pharmacol., 28 (4), 273--276 (1991). DOI: 10.1007/BF00685534
  26. E.E. Petrova, T.I. Valyakina, M.A. Simonova, R.L. Komaleva, S.V. Khaidukov, E.A. Makarov, D.Y. Blokhin, P.K. Ivanov, T.M. Andronova, V.A. Nesmeyanov. Int. Immunopharmacol., 6 (9), 1377--1386 (2006). DOI: 10.1016/j.intimp.2005.11.021
  27. O.I. Hoffmann, C. Ilmberger, S. Magosch, M. Joka, K.-W. Jauch, B. Mayer. J. Biotechnol., 205, 14--23 (2015). DOI: 10.1016/j.jbiotec.2015.02.029

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2024 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme