Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2020, выпуск 7 » Статья стр. 972
<<<>>>
Исследование изменений в спектре поглощения современных хлоринсодержащих препаратов для фотодинамической терапии и метиленового синего в результате воздействия светодиодного излучения с длиной волны 656± 10 nm
DOI: 10.21883/OS.2020.07.49570.55-20
Переводная версия: 10.1134/S0030400X20070024
Правительство РФ, 5 в 100, 08-08
Беликов А.В. 1,2, Семяшкина Ю.В. 1, Смирнов С.Н. 1, Тавалинская А.Д. 1
1Университет ИТМО, Санкт-Петербург, Россия
2Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, Санкт-Петербург, Россия
Email: avbelikov@gmail.com, yvsemyashkina@mail.ru, s.n.smirnov@inbox.ru, ntavalin@gmail.com
Выставление онлайн: 24 апреля 2020 г.
PDF версия
Исследованы изменения в спектрах поглощения водных растворов современных хлоринсодержащих фотосенсибилизирующих препаратов для фотодинамической терапии "Revixan" (Ареал, Россия) и "Chloderm" (Хлодерм, Россия) в диапазоне 600-700 nm в зависимости от интенсивности и времени воздействия светодиодного излучения с длиной волны 656± 10 nm. Исследованы параметры цветовой модели CIE Lab изображения водного раствора "Revixan" до и после светодиодного воздействия. В диапазоне 400-900 nm исследованы изменения в спектрах поглощения водного раствора метиленового синего с различной начальной концентрацией после воздействия светодиодного излучения с длиной волны 656± 10 nm и интенсивностью 180± 20 mW/сm2. Показано, что воздействие светодиодного излучения изменяет спектры поглощения исследованных веществ и увеличивает параметр L (светлота) цветовой модели CIE Lab для "Revixan". Увеличение интенсивности светодиодного излучения и времени воздействия приводит к уменьшению поглощения для "Revixan" и "Chloderm" в диапазоне 600-700 nm и смещению пика полосы поглощения, лежащей в этом диапазоне, в ИК область. Воздействие светодиодного излучения на водный раствор метиленового синего приводит к уменьшению его поглощения в диапазоне 400-900 nm. Ключевые слова: фотодинамическая терапия, Revixan, Chloderm, метиленовый синий, спектр поглощения.
  1. Shishkova N., Kuznetsova O., Berezov T. // Cancer Bio Med. 2012. V. 9. N 1. P. 9-17
  2. Frova G., Quintel M. // Intensive Care Med. 2002. V. 28. P. 299
  3. Maibach H.I., Bashir S.J., McKibbon A. // BC Decter Inc. 2002. P. 290
  4. Park Y-K., Park С-H. // Obstet Gynecol Sci. 2016. V. 59. Iss. 6. P. 479-488
  5. Церковский Д.А., Маслаков Е.А., Багринцев Д.А., Семак И.А., Протопович Е.З., Чиж А.Г., Татур А.А., Фоменков И.С., Ступак Д.С. // Biomed. Photonics. 2018. V. 7. N 2. P. 37-49
  6. Стрункин Д.Н., Жарикова И.П., Кожевников Ю.А., Задонцева Н.С. // Biomed. Photonics. 2017. V. 6. N 2. P. 38-40
  7. Каприн А.Д., Рассказова Е.А., Филоненко Е.В., Сарибекян Э.К., Зикиряходжаев А.Д., Чиссов В.И. // Biomed. Photonics. 2017. V. 6. N 2. P. 34-37
  8. Rodri guez-Prieto M.A., Valladares-Narganes L.M., Gonzalez-Sixto B., Noguerol-Cal M. // J. Am. Acad. Dermatol. 2013. V. 68. N 5. P. 873-875
  9. Capocci M., Mohsen M., Lo Giudice R., Del Vecchio A., Gaimari G. et al. // Proc. SPIE. 2016. V. 9670. P. 967009-1.
  10. Russo C., Palaia G., Loskutova E., Libotte F., Kornblit R. et al. // Proc. SPIE. 2016. V. 9670. P. 96700D-1
  11. Aureliano P.M.C., Andreani D.I., Morete V., Giraldeli S.I., Baptista A. et al. // Proc. SPIE. 2018. V. 10479. P. 104791L-1.
  12. Юцковский А.Д., Кулагина Л.М., Паулов О.И. // Материалы 2-го Съезда микологов России. Национальная академия микологии, 2008. T. 2. C. 548
  13. den Hollander C., Visser J., de Haas E., Incrocci L., Smijs T. // J. Fungi. 2015. V. 1. P. 138-153
  14. Liddell L.T., Rosen T. // J. Fungi. 2015. V. 1. P. 44-54
  15. Christenson J.K., Peterson G.M., Naunton M., Bushell M., Kosari S., Baby K.E., Thomas J. // J. Fungi. 2018. V. 4. N 3. P. 87
  16. Bhatta A.K. et al. // Photodiagn. Photodyn. Ther. 2016. V. 15. P. 228-235
  17. Thatai P., Sapra B. // Ann. Pharmacol. Pharm. 2017. V. 2. N 2. P. 1014
  18. Юсупов А.С., Юсупова Д.А., Юсупова Н.А. Патент РФ N 2010113705/14, 2010
  19. Тучин В.В. // УФН. 1997. Т. 167. В. 5. С. 517-539
  20. Калинкина М.Н., Румянцева В.А., Жмакина И.А., Давыдова Б.Н., Баканова К.Б., Тетарчука В.В., Артамонова А.А. // Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 60-летию деятельности стоматологического факультета Тверской государственной медицинской академии на Тверской земле. 2014
  21. Belikov A.V., Semyashkina Y.V., Modin M.A., Gelfond M.L., Sergeeva E.I. // Proc. SPIE. 2019. V. 11065. P. 1106517
  22. Курочкина А.Ю., Плавский В.Ю., Юдина Н.А. // Медицинский журнал. 2010. N 2. С. 131-133
  23. Junqueira H.C., Severino D., Dias L.G., Gugliotti M., Baptista M.S. // Phys. Chem. Chem. Phys. 2002. V. 4. P. 2320-2328
  24. Pupo Y.M., Gomes G.M., Santos E.B., Chaves L., Michel M.D., Kozlowski V. Jr., Gomes O.M., Gomes J.C. // Acta Odontol. Latinoam. 2011. V. 24. N 2. P. 188-192
  25. Tardivo J.P., Giglio A.D., Paschoal L.H., Baptista M.S. // Photomed. Las. Surg. 2006. V. 24. N 4. P. 528-531
  26. Orth K., Ruck A., Beck G., Stanescu A., Beger H.G. // Z. Alle Gebiete. Operat. Med. 1995. V. 66. N 12. P. 1254-1257
  27. Bugaj A., Kwitniewski M., Iani V., Juzeniene A., Juzenas P., Ma L.W., Moan J. // Photodiagn. Photodyn. Ther. 2007. V. 4. N 4. P. 237-241
  28. James N.S., Cheruku R.R., Missert J.R., Sunar U., Pandey R.K. // Molecules. 2018. V. 23. N 8. P. 1842-1853
  29. Kurakina D. et al. // Appl. Sci. 2019. V. 9. P. 1918
  30. Georgakoudi I., Foster T.H. // Photochem. Photobiol. 1998. V. 67. P. 612-625
  31. Georgakoudi I., Nichols M.G., Foster T.H. // Photochem. Photobiol. 1997. V. 65. N 1. P. 35-144
  32. Ishii K., Shiine M., Shimizu Y., Hoshino S., Abe H., Sogawa K., Kobayashi N. // J. Phys. Chem. B. 2008. V. 112. V. 10. P. 3138-3143
  33. Moan J., lani V., Ma L.W. // J. Photochem. Photobiol. 1998. V. 42. P. 100-103
  34. Moan J., lani V., Ma L.W., Peng Q. // Proc. SPIE. 1996. V. 2625. P. 187-193
  35. Ma L.W., Moan J., Grahn M.F., lani V. // Proc. SPIE. 1996. V. 2924. N 2. P. 19-225
  36. Robinson D.J., de Bruijn H.S., van derVeen N., Stringer M.R., Brown S.B., Star W.M. // Photochem. Photobiol. 1998. V. 67. P. 140-149
  37. Forrer M., Glanzmann T., Braichotte D., Wagnieres G., van den Bergh H., Savary J.F., Monnier Ph. // Proc. SPIE. 1996. V. 2627. P. 33-39
  38. Potter W.R., Mang T.S., Dougherty T.J. // Photochem. Photobiol. 1987. V. 46. P. 853-858
  39. Wilson B.C., Patterson M.S., Lilge L. // Las. Med. Sci. 1997. V. 12. P. 182-199
  40. Hawkes R.P., Farrell T.J., Patterson M.S., Weersink R.A. // Proc. SPIE. 1997. V. 2975. P. 208-221
  41. Цвет в промышленности / Под ред. Мак-Дональда Р. М.: Логос, 2002. 596 с
  42. Юстова Е.Н. Цветовые измерения (Колориметрия). СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского ун-та, 2000. 397 с
  43. Беликов А.В., Семяшкина Ю.В., Модин М.А., Жубрёв Д.Р. // Научно-техн. вестник информ. технологий, механики и оптики. 2017. Т. 17. N 5. 111. С. 782-789.

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2024 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme