Вышедшие номера
Поверхностный плазмонный резонанс и агрегативная стабильность комплексов наночастиц серебра с химотрипсином
Переводная версия: 10.1134/S0030400X18080192
Плющенко А.В. 1, Митусова К.А. 1, Боровикова Л.Н. 1, Киппер А.И. 1, Писарев О.А. 1
1Институт высокомолекулярных соединений Российской академии наук, Санкт-Петербург, Россия
Email: anutta999@mail.ru, mitusova.kseniya@mail.ru, diadora3mail.ru, kipper@imc.macro.ru, chrom79@yandex.ru
Выставление онлайн: 20 июля 2018 г.

Изучены спектры экстинкции, эффективные размеры и агрегативная стабильность наночастиц серебра и нанокомплексов наночастиц серебра с химотрипсином, полученных реакций химического восстановления нитрата серебра с использованием в качестве восстановителя боргидрида натрия. Показано, что наночастицы серебра, полученные в отсутствие химотрипсина, агрегативно стабильны только при значениях рН непосредственно после синтеза. Помещение синтезированных наночастиц серебра в буферные растворы со значениями рН от 3.0 до 12.0 приводило к появлению широкой полосы поглощения в видимой области спектра, что связано с агломерацией наночастиц серебра, которая, по всей видимости, является результатом разрушения двойного электрического слоя, образованного ионами, составляющими боргидрид натрия. Присутствие химотрипсина в реакционной среде приводило к существенным спектральным изменениям. В отличие от наночастиц серебра, синтезированных в отсутствие химотрипсина, для нанокомплексов наночастиц серебра с химотрипсином при изменении рН форма спектров экстинкции и положение полосы поверхностного плазмонного резонанса сохранялись, при этом в диапазоне рН от 3.0 до 12.0 нанокомплексы наночастиц серебра с химотрипсином сохраняли агрегативную стабильность в растворах в течение месяца. Обнаруженный эффект стабилизации наночастиц серебра в широком диапазоне рН, индуцируемый присутствием химотрипсина в реакционной среде, может быть в дальнейшем использован для разработки методов иммобилизации ферментов на наночастицах биогенных элементов, а также для создания полифункциональных лекарственных препаратов, в которых составляющие нанокомплексов обладают различной биологической активностью. -18
  1. Терентьева E.A., Апяри В.В., Кочук Е.В., Дмитриенко С.Г., Золотов Ю.А. // Журн. аналит. химии. 2017. Т. 72. N 11. С. 978; Terenteva E.A., Apyari V.V., Kochuk E.V., Dmitrienko S.G., Zolotov Yu.A. // J. Analyt. Chem. 2017. V. 72. N 11. P. 1138. doi 10.1134/S1061934817120097
  2. Bhosale M.A., Bhanage B.M. // Current Organic Chemistry. 2015. V. 19. N 8. C. 708
  3. Alshehri A.H., Jakubowska M., Mlozniak A., Horaczek M., Rudka D., Free C., Carey J.D. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2012. V. 4. N 12. P. 7007. doi 10.1021/am3022569
  4. Tran Q.H., Nguyen V.Q., Le A.T. // Adv. Nat. Sci.: Nanosci. Nanotechnol. 2013. V. 4. N 3. P. 033001. doi 10.1088/2043-6262/4/3/033001
  5. Wei L., Lu J., Xu H., Patel A., Chen Z.S., Chen G. // Drug Discov. Today. 2015. V. 20. N 5. P. 595. doi 10.1016/j.drudis.2014.11.014
  6. Morones J.R., Elechiguerra J.L., Camacho A., Holt K., Kouri J.B., Ramirez J.T., Yacaman M.J. // Nanotechnology. 2005. V. 16. N 10. P. 2346. doi 10.1088/0957-4484/16/10/059
  7. Song K.C., Lee S.M., Park T.S., Lee B.S. // Korean J. Chem. Eng. 2009. V. 26. N 1. P. 153. doi 10.1007/s11814-009-0024-y
  8. Оленин А.Ю., Лисичкин Г.В. // Усп. хим. 2011. Т. 80. N 7. C. 635; Olenin A.Y., Lisichkin G.V. // Russ. Chem. Rev. 2011. V. 80. N 7. P. 605. doi 10.1070/RC2011v080n07ABEH004201
  9. Помогайло А.Д., Розенберг А.С., Джардималиева Г.И. // Усп. хим. 2011. Т. 80. С. 272; Pomogailo A.D., Rosenberg A.S., Dgardimalieva G.I. // Russ. Chem. Rev. 2011. V. 80. N 3. P. 257
  10. Zewde B., Ambaye A., Stubbs J.III, Dharmara R. // JSM Nanotechnol. Nanomed. 2016. V. 4. N 2. P. 1043
  11. El Badawy A.M., Luxton T.P., Silva R.G., Scheckel K.G., Suidan M.T., Tolaymat T.M. // Environ. Sci. Technol. 2010. V. 44. N 4. P. 1260. doi 10.1021/es902240k
  12. Писарев О.А., Титова А.В., Боровикова Л.Н., Киппер А.И., Ворошилова Т.М., Панарин Е.Ф. // Известия АН. Сер. хим. 2016. N 3. С. 790; Pisarev O.A., Titova A.V., Borovikova L.N., Kipper A.I., Panarin E.F., Voroshilova T.M. // Russian Chemical Bulletin. 2015. V. 65. N 3. P. 790. doi 10.1007/s11172-016-1375-2
  13. Titova A., Borovikova L., Kipper A., Pisarev O. // Chemistry Research J. 2017. V. 2. N 5. P. 204
  14. Moores A., Goettmann F. // New J. Chem. 2006. V. 30. N 8. P. 1121. doi 10.1039/B604038C
  15. Brown W. Dynamic Light Scattering: the Method and Some Application. Oxford: Clarondon Press, 1993. 617 p
  16. Novotny L., Hech B. Principles of Nano-Optics. 2nd Edition. Cambridge: Cambridge University Press, 2012. 578 p
  17. Yin Y., Li Z.Y., Zhong Z., Gates B., Xia Y., Venkateswaran S. // J. Mater. Chem. 2002. V. 12. N 3. P. 522-527. doi 10.1039/B107469E
  18. Chen M., Wang L.Y., Han J.T. // J. Phys. Chem. B. 2006. V. 110. N 23. P. 11224. doi 10.1021/jp061134n

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.