Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2026, выпуск 1 » Статья стр. 103
<<<>>>
Сравнительное исследование свежей и лиофилизированной биомассы бактерии Enterobacter cloacae K-7 методами колебательной спектроскопии
Российский научный фонд, Гранты для отдельных малых групп, 24-26-00209
Камнев А.А. 1, Дятлова Ю.А. 1, Климин С.А.2, Тугарова А.В. 1
1Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов, Саратовский научный центр РАН, Саратов, Россия
2Институт спектроскопии РАН, Троицк, Москва, Россия
Email: a.a.kamnev@mail.ru, jdyatlowa2013@yandex.ru, klimin@isan.troitsk.ru, tugarova_anna@mail.ru
Поступила в редакцию: 22 ноября 2025 г.
В окончательной редакции: 6 декабря 2025 г.
Принята к печати: 6 декабря 2025 г.
Выставление онлайн: 24 февраля 2026 г.
PDF версия
Проведен сравнительный анализ спектров комбинационного рассеяния света (КРС) образцов свежей (отделенной центрифугированием и отмытой от культуральной среды; без высушивания) и лиофилизированной биомассы планктонной культуры бактерии Enterobacter cloacae K-7, а также инфракрасного (ИК) спектра последней (в режиме пропускания). Показано, что для свежей биомассы наличие значительного количества воды в образце в случае спектров КРС не приводит к маскировке или сдвигу основных полос функциональных групп биомакромолекул, характерных для бактерий, в сравнении с лиофилизированными клетками E. cloacae. Для последних как в спектрах КРС, так и в ИК спектрах также присутствуют типичные для бактерий полосы колебаний основных функциональных групп. Полученные результаты указывают на возможность использования обоих способов пробоподготовки бактериальных биомасс для общего сравнительного анализа их биомакромолекулярного состава методом спектроскопии КРС, а также в случае лиофилизированной биомассы методом ИК спектроскопии. Ключевые слова: биомасса бактерий, спектроскопия комбинационного рассеяния света, инфракрасная спектроскопия, лиофилизация, Enterobacter cloacae.
  1. A. Kassem, L. Abbas, O. Coutinho, S. Opara, H. Najaf, D. Kasperek, K. Pokhrel, X. Li, S. Tiquia-Arashiro. Front. Microbiol., 14, 1304081 (2023). DOI: 10.3389/fmicb.2023.1304081
  2. А.А. Камнев, А.В. Тугарова. Журн. аналит. химии, 78 (10), 914 (2023). DOI: 10.31857/S0044450223100109 [A.A. Kamnev, A.V. Tugarova. J. Analyt. Chem., 78 (10), 1320 (2023). DOI: 10.1134/S1061934823100106]
  3. G. Pezzotti. J. Raman Spectrosc., 52 (12), 2348-2443 (2021). DOI: 10.1002/jrs.6204
  4. K.S. Lee, Z. Landry, A. Athar, U. Alcolombri, P. Pramoj Na Ayutthaya, D. Berry et al. Nat. Microbiol., 9, 1152?1156 (2024). DOI: 10.1038/s41564-024-01656-3
  5. E. Fardelli, A. D?Arco, S. Lupi, D. Billi, R. Moeller, M. Cestelli Guidi. Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc., 288, 122148 (2023). DOI: 10.1016/j.saa.2022.122148
  6. I. Saraeva, D. Zayarny, E. Tolordava, A. Nastulyavichus, R. Khmelnitsky, D. Khmelenin, S. Shelygina, S. Kudryashov. Chemosensors, 11 (7), 361 (2023). DOI: 10.3390/chemosensors11070361
  7. C. Lima, H. Muhamadali, R. Goodacre. Sensors, 22 (10), 3928 (2022). DOI: 10.3390/s22103928
  8. A.V. Tugarova, P.V. Mamchenkova, Yu.A. Dyatlova, A.A. Kamnev. Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc., 192, 458-463 (2018). DOI: 10.1016/j.saa.2017.11.050
  9. M.G. Fernandez-Manteca A.A., Ocampo-Sosa, D.F. Vecilla, M.S. Ruiz, M.P. Roiz, F. Madrazo, J. Rodri guez-Grande, J. Calvo-Montes, L. Rodri guez-Cobo, J.M. Lopez-Higuera, M.C. Farinas, A. Cobo. Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc., 319, 124533 (2024). DOI: 10.1016/j.saa.2024.124533
  10. R.T. Vulchi, V. Morgunov, R. Junjuri, T. Bocklitz. Molecules, 29 (19), 4748 (2024). DOI: 10.3390/molecules29194748
  11. A.A. Kamnev, A.V. Tugarova, Yu.A. Dyatlova, P.A. Tarantilis, O.P. Grigoryeva, A.M. Fainleib, S. De Luca. Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc., 193, 558-564 (2018). DOI: 10.1016/j.saa.2017.12.051
  12. A.A. Kamnev, Yu.A. Dyatlova, O.A. Kenzhegulov, A.A. Vladimirova, P.V. Mamchenkova, A.V. Tugarova. Molecules, 26 (4), 1146 (2021). DOI: 10.3390/molecules26041146
  13. A.A. Kamnev, Yu.A. Dyatlova, O.A. Kenzhegulov, Yu.P. Fedonenko, S.S. Evstigneeva, A.V. Tugarova. Molecules, 28 (4), 1949 (2023). DOI: 10.3390/molecules28041949
  14. M.Z. Iqbal, K. Singh, R. Chandra. Cleaner Eng. Technol., 23, 100845 (2024). DOI: 10.1016/j.clet.2024.100845
  15. R. Singh, S. Kaur, S.S. Bhullar, H. Singh, L.K. Sharma. J. Sustain. Agric. Environ., 3, e12085 (2024). DOI: 10.1002/sae2.12085
  16. N. Khan, S. Ali, M.A. Shahid, A. Mustafa, R.Z. Sayyed, J.A. Cura. Cells, 10 (6), 1551 (2021). DOI: 10.3390/cells10061551
  17. B.N. Aloo, V. Tripathi, B.A. Makumba, E.R. Mbega. Front. Plant Sci., 13, 1002448 (2022). DOI: 10.3389/fpls.2022.1002448
  18. A.A. Agboola, T.A. Ogunnusi, O.G. Dayo-Olagbende, O.B. Akpor. Open Microbiol. J., 17 (1), e187428582308080 (2023). DOI: 10.2174/18742858-v17-230823-2023-8
  19. R.P. Singh, D.M. Pandey, P.N. Jha, Y. Ma. PloS One, 17 (5), e0267127 (2022). DOI: 10.1371/journal.pone.0267127
  20. Ye.V. Kryuchkova, G.L. Burygin, N.E. Gogoleva, Yu.V. Gogolev, M.P. Chernyshova, O.E. Makarov, E.E. Fedorov, O.V. Turkovskaya. Microbiol. Res., 169, 99-105 (2014). DOI: 10.1016/j.micres.2013.03.002
  21. K.K. Meena, N.K. Taneja, A. Ojha, S. Meena. Ann. Phytomed., 12 (1), 706-716 (2023). DOI: 10.54085/ap.2023.12.1.76
  22. C.A. Morgan, N. Herman, P.A. White, G. Vesey. J. Microbiol. Meth., 66 (2), 183-193 (2006). DOI: 10.1016/j.mimet.2006.02.017
  23. A.H. Garci a. J. Biosci., 36 (5), 939?950 (2011). DOI: 10.1007/s12038-011-9107-0
  24. J.T. Lennon, S.E. Jones. Nat. Rev. Microbiol., 9, 119-130 (2011). DOI: 10.1038/nrmicro2504
  25. A.J. Szekely, S. Langenheder. ISME J., 11, 1764-1776 (2017). DOI: 10.1038/ismej.2017.55
  26. E.T. da Cunha, A.M. Pedrolo, A.C.M. Arisi. Arch. Microbiol., 205 (5), 190 (2023). DOI: 10.1007/s00203-023-03542-8
  27. S. Mahmud, S. Khan, M.R. Khan, J. Islam, U.K. Sarker, G.M.M.A. Hasan, M. Ahmed. J. Food Proc. Preserv., 46, e17123 (2022). DOI: 10.1111/jfpp.17123
  28. O.A. Kenzhegulov, Yu.A. Dyatlova, S.A. Klimin, A.V. Tugarova, A.A. Kamnev. Microbiology (Moscow), 93 (Suppl. 1), S153-S156 (2024). DOI: 10.1134/S0026261724609692
  29. M.L. Paret, S.K. Sharma, L.M. Green, A.M. Alvarez. Appl. Spectrosc., 64 (4), 433-441 (2010)
  30. F. SantAna de Siqueira e Oliveira, H.E. Giana, L. Silveira, Jr.J. Biomed. Optics, 17 (10), 107004 (2012). DOI: 10.1117/1.JBO.17.10.107004
  31. A. Nakar, A. Wagenhaus, P. R?sch, J. Popp. Analyst, 147, 3938-3946 (2022). DOI: 10.1039/d2an00822j
  32. J. Le Galudec, M. Dupoy, L. Duraffourg, V. Rebuffel, P.R. Marcoux. Microb. Biotechnol., 18, e70093 (2025). DOI: 10.1111/1751-7915.70093
  33. R.J. Delle-Bovi, A. Smits, H.M. Pylypiw. Amer. J. Anal. Chem., 2, 212-216 (2011). DOI: 10.4236/ajac.2011.22025
  34. S. Correa-Garci a, M. Bermudez-Moretti, A. Travo, G. Deleris, I. Forfar. Anal. Methods, 6, 1855-1861 (2014). DOI: 10.1039/C3AY42322K

Учредители

Издатель

© 2026 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme