Оптическое просветление кожи человека in vivo с помощью водных растворов сорбитола, ксилитола, ксилозы и ДМСО
Российский научный фонд, 23-14-00287
Березин К.В.
1, Степанович Е.Ю.
2, Лихтер А.М.
2, Дворецкий К.Н.
3, Грабарчук Е.В.
2, Генина Э.А.
1,4, Янина И.Ю.
1,4, Правдин А.Б.
1, Сурков Ю.И.
1, Тучин В.В.
1,4,51Саратовский национальный исследовательский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского, Саратов, Россия
2Астраханский государственный университет, Астрахань, Россия
3Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского, Саратов, Россия
4Национальный исследовательский Томский государственный университет, Томск, Россия
5Институт проблем точной механики и управления, ФИЦ Саратовский научный центр РАН", Саратов, Россия
Email: berezinkv@yandex.ru, likhter@bk.ru, dcn@yandex.ru, kof_712@mail.ru, eagenina@yandex.ru, irina-yanina@yandex.ru, pravdinab@mail.ru, surkov9898@gmail.com, tuchinvv@mail.ru
Поступила в редакцию: 6 февраля 2025 г.
В окончательной редакции: 4 марта 2025 г.
Принята к печати: 7 апреля 2025 г.
Выставление онлайн: 1 июля 2025 г.
С помощью метода оптической когерентной томографии получены результаты иммерсионного оптического просветления кожи человека in vivo с использованием в качестве иммерсионного агента водных растворов сорбитола, ксилитола, D-ксилозы и диметилсульфоксида. Для оценки эффективности оптического просветления определялись значения скорости изменения коэффициента рассеяния света, полученные с помощью усреднённого A-скана оптической когерентной томографии сигнала на участке дермы на глубине от 350 до 700 μm. В результате молекулярного моделирования методами классической молекулярной динамики (GROMACS) взаимодействия молекул иммерсионных агентов с пептидом коллагена ((GPH)_3)9 определено количество водородных связей, образующихся в единицу времени для каждого агента и влияние этих агентов на пространственный объём пептида коллагена. Методами квантовой химии HF/STO3G/DFT/B3LYP/6-311G(d) рассчитана энергия межмолекулярного взаимодействия в комплексах иммерсионных агентов с фрагментом пептида коллагена ((GPH)_3)2, установлена корреляция эффективности оптического просветления с энергией межмолекулярного взаимодействия. Подробно обсуждаются неклассические водородные связи, возникающие при взаимодействии диметилсульфоксида с ((GPH)_3)9 и молекулами воды. Ключевые слова: молекулярное моделирование, оптическое просветление кожи человека, водородные связи, молекулярная динамика, квантовая химия, иммерсионные агенты, коэффициент диффузии.
- V.V. Tuchin. Tissue optics: light scattering methods and instruments for medical diagnostics, 3rd ed. (PM 254, SPIE Press, Bellingham, WA, 2015). DOI: 10.1117/3.1003040
- H. Jonasson, I. Fredriksson, S. Bergstrand, C.J. Ostgren, M. Larsson, T. Stromberg. J. Biomed. Opt., 23 (12), 121608 (2018). DOI: 10.1117/1.JBO.23.12.121608
- Handbook of tissue optical clearing: new prospects in optical imaging, ed. by V.V. Tuchin, D. Zhu, E.A. Genina (Taylor \& Francis Group LLC, CRC Press, Boca Raton, FL, 2022). DOI: 10.1201/9781003025252
- J.M. Hirshburg. Chemical agent induced reduction of skin light scattering: doctoral dissertation. (Texas A \& M University, 2009)
- D. Zhu, K.V. Larin, Q. Luo, V.V. Tuchin. Laser Photonics Rev., 7 (5), 732 (2013). DOI: 10.1002/lpor.201200056
- A.N. Bashkatov, K.V. Berezin, K.N. Dvoretskiy, M.L. Chernavina, E.A. Genina, V.D. Genin, V.I. Kochubey, E.N. Lazareva, A.B. Pravdin, M.E. Shvachkina, P.A. Timoshina, D.K. Tuchina, D.D. Yakovlev, D.A. Yakovlev, I.Yu. Yanina, O.S. Zhernovaya, V.V. Tuchin. J. Biomed. Opt., 23 (9), 091416 (2018). DOI: 10.1117/1.JBO.23.9.091416
- L. Oliveira, V.V. Tuchin. The optical clearing method: a new tool for clinical practice and biomedical engineering (Springer Nature Switzerland AG, Basel, 2019). DOI: 10.1007/978-3-030-33055-2
- I. Costantini, R. Cicchi, L. Silvestri, F. Vanzi, F.S. Pavone. Biomedical Optics Express, 10 (10), 5251 (2019). DOI: 10.1364/boe.10.005251
- P. Matryba, L. Kaczmarek, J. Goab. Laser Photonics Rev., 13 (8), 1800292 (2019). DOI: 10.1002/lpor.201800292
- T. Yu, J. Zhu, D. Li, D. Zhu. iScience, 24 (3), 102178 (2021). DOI: 10.1016/j.isci.2021.102178
- I.S. Martins, H.F. Silva, E.N. Lazareva, N.V. Chernomyrdin, K.I. Zaytsev, L.M. Oliveira, V.V. Tuchin. Biomedical Optics Express, 14 (1), 249 (2023). DOI: 10.1364/BOE.479320
- E.C. Cheshire, R.D.G. Malcomson, S. Joseph, A. Adnan, D. Adlam, G.N. Rutty. Int. J. Legal Med., 131, 1377 (2017). DOI: 10.1007/s00414-017-1570-1
- T. Yu, J. Zhu, Y. Li, Y. Ma, J. Wang, X. Cheng, S. Jin, Q. Sun, X. Li, H. Gong, Q. Luo, F. Xu, S. Zhao, D. Zhu. Sci. Rep., 8 (1), 1964 (2018). DOI: 10.1038/s41598-018-20306-3
- J. Musakhanian, D.W. Osborne, J-D. Rodier. AAPS PharmSciTech, 25 (7), 201 (2024). DOI: 10.1208/s12249-024-02886-8
- E.A. Genina, A.N. Bashkatov, E.A. Kolesnikova, M.V. Basko, G.S. Terentyuk, V.V. Tuchin. J. Biomed. Optics, 19 (2), 021109 (2013). DOI: 10.1117/1.JBO.19.2.021109
- B. Kumar, S.K. Jain, S.K. Prajapati. Intern. J. Drug Delivery, 3 (1), 93 (2011). DOI: 10.5138/ijdd.2010.0975.0215.03057
- S.M. Zaytsev, Yu.I. Svenskaya, E.V. Lengert, G.S. Terentyuk, A.N. Bashkatov, V.V. Tuchin, E.A. Genina. J. Biophotonics, 13 (4), e201960020 (2020). DOI: 10.1002/jbio.201960020
- S. Karma, J. Homan, C. Stoianovici, B. Choi. J. Innovative Optical Health Sciences, ( 3) 3, 153 (2010). DOI: 10.1142/S1793545810001015
- A.K. Bui, R.A. McClure, J. Chang, C. Stoianovici, J. Hirshburg, A.T. Yeh, B. Choi. Lasers in Surgery and Medicine, 41 (2), 142 (2009). DOI: 10.1002/lsm.20742
- X. Wen, S.L. Jacques, V.V. Tuchin, D. Zhu. J. Biomed. Opt., 17 (6), 066022 (2012). DOI: 10.1117/1.JBO.17.6.066022
- A.N. Bashkatov, E.A. Genina, V.V. Tuchin. Handbook of optical sensing of glucose in biological fluids and tissues, ed. by V.V. Tuchin (Taylor \& Francis Group LLC, CRC Press, 2009), ch. 21. DOI: 10.1201/9781584889755
- К.В. Ларин, В.В. Тучин. Квант. электрон., 38 (6), 551 (2008). [K.V. Larin, V.V. Tuchin. Quantum Electronics, 38 (6), 551 (2008). DOI: 10.1070/QE2008v038n06ABEH013850]
- D.K. Tuchina, R. Shi, A.N. Bashkatov, E.A. Genina, D. Zhu, Q. Luo, V.V. Tuchin. J. Biophotonics, 8 (4), 332 (2015). DOI: 10.1002/jbio.201400138
- V. Hovhannisyan, P.-S. Hu, S.-J. Chen, C.-S. Kim, C.-Y. Dong. J. Biomed. Opt., 18 (4), 046004 (2013). DOI: 10.1117/1.JBO.18.4.046004
- A.Yu. Sdobnov, M.E. Darvin, E.A. Genina, A.N. Bashkatov, J. Lademann, V.V. Tuchin. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy, 197, 216 (2018). DOI: 10.1016/j.saa.2018.01.085
- A.T. Yeh, B. Choi, J.S. Nelson, B.J. Tromberg. J. Investigative Dermatology, 121 (6), 1332 (2003). DOI: 10.1046/j.1523-1747.2003.12634.x
- Z. Ou, Yi-Sh. Duh, N.J. Rommelfanger, C.H.C. Keck, Sh. Jiang, K. Brinson Jr., S. Zhao, E.L. Schmidt, X. Wu, F. Yang, B. Cai, H. Cui, W. Qi, Sh. Wu, A. Tantry, R. Roth, J. Ding, X. Chen, J.A Kaltschmidt, M.L. Brongersma, G. Hong. Science, 385 (6713), eadm6869 (2024). DOI: 10.1126/science.adm686
- V.V. Tuchin, D.M. Zhestkov, A.N. Bashkatov, E.A. Genina. Optics Express, 12 (13), 2966 (2004). DOI: 10.1364/OPEX.12.002966
- V.V. Tuchin. Optical clearing of tissues and blood (PM 154, SPIE Press, Bellingham, WA, 2005). DOI: 10.1117/3.637760
- O. Sydoruk, O. Zhernovaya, V. Tuchin, A. Douplik. J. Biomed. Opt., 17 (11), 115002-1-6 (2012). DOI: 10.1117/1.JBO.17.11.115002
- O. Zhernovaya, V.V. Tuchin, M.J. Leahy. J. Biomed. Opt., 18 (2), 026014-1-8 (2013). DOI: 10.1117/1.JBO.18.2.026014
- O.S. Zhernovaya, E.A. Genina, V.V. Tuchin, A.N. Bashkatov. Handbook of tissue optical clearing: new prospects in optical imaging, ed. by V.V. Tuchin, D. Zhu, E.A. Genina (Taylor \& Francis Group LLC, CRC Press, Boca Raton, FL, 2022), p. 383-392. DOI: 10.1201/9781003025252
- T. Yu, X. Wen, V.V. Tuchin, Q. Luo, D. Zhu. J. Biomed. Opt., 16 (9), 095002 (2011). DOI: 10.1117/1.3621515
- X. Wen, Z. Mao, Z. Han, V.V. Tuchin, D. Zhu. J. Biophotonics, 3 (1-2), 44 (2010). DOI: 10.1002/jbio.200910080
- A.Yu. Sdobnov, M.E. Darvin, J. Schleusener, J. Lademann, V.V. Tuchin. J. Biophotonics, 12 (5), e201800283 (2019). DOI: 10.1002/jbio.201800283
- K.V. Berezin, E.V. Grabarchuk, A.M. Lichter, K.N. Dvoretski, V.V. Tuchin. J. Biophotonics, 17 (2), e202300354 (2024). DOI: 10.1002/jbio.202300354
- К.В. Березин, Е.В. Грабарчук, А.М. Лихтер, К.Н. Дворецкий, Ю.И. Сурков, В.В. Тучин. ЖТФ, 94 (3), 515 (2024). DOI: 10.61011/JTF.2024.03.57392.318-23 [K.V. Berezin, E.V. Grabarchuk, A.M. Lichter, K.N. Dvoretski, Yu.I. Surkov, V.V. Tuchin. Technical Physics, 69 (3), 485 (2024). DOI: 10.21883/0000000000]
- C.C.J. Roothaan. Rev. Modern Phys., 23 (2), 69 (1951). DOI: 10.1103/RevModPhys.23.69
- R. Goldberg, B. Lang, B. Coxon, S. Decker. J. Chem. Thermodynamics, 15 (2), 2 (2012). DOI: 10.1016/j.jct.2011.07.004
- D.J. Faber, F.J. van der Meer, M.C.G. Aalders, T.G. van Leeuwen. Opt. Express, 12 (19), 4353 (2004). DOI: 10.1364/OPEX.12.004353
- P. Lee, W. Gao, X. Zhang. Appl. Opt., 49 (18), 3538 (2010). DOI: 10.1364/AO.49.003538
- E.A. Genina, A.N. Bashkatov, E.A. Kolesnikova, M.V. Basko, G.S. Terentyuk, V.V. Tuchin. J. Biomed. Opt., 19 (2), 021109 (2014). DOI: 10.1117/1.JBO.19.2.021109
- R.K. Wang, V.V. Tuchin. Handbook of coherent-domain optical methods, biomedical diagnostics, environmental monitoring, and material science, vol. 2, 2nd ed., ed. by V.V. Tuchin (Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, N.Y., 2013), vol. 2, p. 665. DOI: 10.1007/978-1-4614-5176-1
- Э.А. Генина, Н.С. Ксенофонтова, А.Н. Башкатов, Г.С. Терентюк, В.В. Тучин. Квант.электрон., 47 (6), 561 (2017). [E.A. Genina, N.S. Ksenofontova, A.N. Bashkatov, G.S. Terentyuk, V.V. Tuchin. Quantum Electronics, 47 (6), 561 (2017). DOI: 10.1070/QEL16378]
- K. Okuyama, K. Miyama, K. Mizuno, H.P. Bachinger. Biopolymers, 97 (8), 607 (2012). DOI: 10.1002/bip.22048
- W.D. Cornell, P. Cieplak, C.I. Bayly, I.R. Gould, K.M.Jr. Merz, D.M. Ferguson, D.C. Spellmeyer, T. Fox, J.W. Caldwell, P.A. Kollman. J. Am. Chem. Soc., 117 (19), 5179 (1995). DOI: 10.1021/ja00124a002
- A.D. Becke. J. Chem. Phys., 98 (7), 5648 (1993). DOI: 10.1063/1.464913
- C. Lee, W. Yang, R.G. Parr. Phys. Rev. B, 37 (2), 785 (1988). DOI: 10.1103/PhysRevB.37.785
- M.J. Frisch, G.W. Trucks, H.B. Schlegel et al. Gaussian09, revision A.02 (Gaussian Inc, Pittsburgh PA, 2009)
- D. Van der Spoel, E. Lindahl, B. Hess, G. Groenhof, E.A. Mark, H.J.C. Berendsen. J. Comput. Chem., 26 (16), 1701 (2005). DOI: 10.1002/jcc.20291
- Y. Duan, C. Wu, S. Chowdhury, M.C. Lee, G. Xiong, W. Zhang, R. Yang, P. Cieplak, R. Luo, T. Lee, J. Caldwell, J. Wang, P. Kollman. J. Comp. Chem., 24 (16), 1999 (2003). DOI: 10.1002/jcc.10349
- H.J.C. Berendsen, J.P.M. Postma, W.F. van Gunsteren, A. DiNola, J.R. Haak. J. Chem. Phys., 81 (8), 3884 (1984). DOI: 10.1063/1.448118
- W. Humphrey, A. Dalke, K. Schulten. J. Mol. Graph., 14 (1), 33 (1996). DOI: 10.1016/0263-7855(96)00018-5
- H.D. Loof, L. Nilsson, R. Rigler. J. Am. Chem. Soc., 114 (11), 4028 (1992). DOI: 0.1021/ja00037a002
- K.V. Berezin, K.N. Dvoretski, M.L. Chernavina, A.M. Likhter, V.V. Smirnov, I.T. Shagautdinova, E.M. Antonova, E.Yu. Stepanovich, E.A. Dzhalmuhambetova, V.V. Tuchin. J. Mol. Modeling., 24 (2), 45 (2018). DOI: 10.1007/s00894-018-3584-0
- Y. Duan, C. Wu, S. Chowdhury, M.C. Lee, G. Xiong, W. Zhang, R. Yang, P. Cieplak, R. Luo, T. Lee, J. Caldwell, J. Wang, P. Kollman. J. Comp. Chem., 24 (16), 1999 (2003). DOI: 10.1002/jcc.10349
- A. Jumabaev, H. Hushvaktov, B. Khudaykulov, A. Absanov, M. Onuk, I. Doroshenko, L. Bulavin. Ukr. J. Phys., 68 (6), 375 (2023). DOI: 10.15407/ujpe68.6.375
- J.-D. Chai, M. Head-Gordon. J. Chem. Phys., 128 (8), 084106 (2008). DOI: 10.1063/1.2834918
- S. Simon, M. Duran, J.J. Dannenberg. J. Chem. Phys., 105 (24), 11024-11031 (1996). DOI: 10.1063/1.472902
- V.D. Genin, D.K. Tuchina, A.J. Sadeq, E.A. Genina, V.V. Tuchin, A.N. Bashkatov. J. Biomed. Photonics \& Engineering, ( 2) 1, 010303 (2016). DOI: 10.18287/JBPE16.02.010303
Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.
Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.