Вышедшие номера
Влияние рН среды на свойства углеродных точек с различной функционализацией поверхности: размеры и квантовый выход фотолюминесценции
Российский научный фонд (РНФ), 22-12-00138
Хмелева М.Ю. 1, Лаптинский К.А. 2, Доленко Т.А. 1
1Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
2Научно-исследовательский институт ядерной физики им. Д.В. Скобельцына Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
Email: khmeliova.maria@gmail.com, laptinskiy@physics.msu.ru, tdolenko@mail.ru
Поступила в редакцию: 26 ноября 2022 г.
В окончательной редакции: 20 января 2023 г.
Принята к печати: 2 февраля 2023 г.
Выставление онлайн: 19 июля 2023 г.

Исследованы углеродные точки, полученные гидротермальным методом с последующей функционализацией поверхности карбоксильными и гидроксильными группами. В результате изучения оптических свойств и суспензируемости углеродных точек, имеющих на поверхности преимущественно один тип функциональных групп, было обнаружено существенное влияние на них кислотности окружения. Установлено, что наибольшие изменения квантового выхода фотолюминесценции проявляются в диапазонах изменения от рН 2 до рН 5 для углеродных точек с карбоксильными поверхностными группами и от рН 8 до рН 12 для углеродных точек с гидроксильными группами. Обнаружено, что изменение фотолюминесцентных свойств исследуемых наночастиц в указанных выше диапазонах рН может быть обусловлено не только изменением заряда поверхности при де-/протонировании функциональных групп, но и агрегацией наночастиц, обусловленной этим же де-/протонированием. Ключевые слова: углеродные точки, фотолюминесцентная спектроскопия, наносенсорика, водородный показатель, функционализация поверхности наночастиц, агрегация.
  1. М. Jorns, D. Pappas. Nanomaterials, 11 (6), 1448 (2021). DOI: 10.3390/nano11061448
  2. B.D. Mansuriya, Z. Altintas. Nanomaterials, 11 (10), 2525 (2021). DOI: 10.3390/nano11102525
  3. X. Yan, X. Cui, L. Li. J. Am. Chem. Soc., 132 (17), 5944 (2010). DOI: 10.1021/ja1009376
  4. O.E. Sarmanova, K.A. Laptinskiy, M.Yu. Khmeleva, S.A. Burikov, S.A. Dolenko, A.E. Tomskaya, T.A. Dolenko. Spectrochim. Acta A, 258, 119861 (2021). DOI: 10.1016/j.saa.2021.119861
  5. A. Nair, J.T. Haponiuk, S. Thomas, S. Gopi. Biomed. Pharmacoth., 132, 110834 (2020). DOI: 10.1016/j.biopha.2020.110834
  6. O.E. Sarmanova, S.A. Burikov, S.A. Dolenko, I.V. Isaev, K.A. Laptinskiy, N. Prabhakar, D.S. Karaman, J.M. Rosenholm, O.A. Shenderova, T.A. Dolenko. Nanomedicine: Nanotechnol. Biol. Med., 14 (4), 1371 (2018). DOI: 10.1016/j.nano.2018.03.009
  7. T.A. Dolenko, S.A. Burikov, A.M. Vervald, I.I. Vlasov, S.A. Dolenko, K.A. Laptinskiy, J.M. Rosenholm, O.A. Shenderova. J. Biomed. Оpt., 19 (11), 117007 (2014). DOI: 10.1117/1.jbo.19.11.117007
  8. М.Ю. Хмелева, К.А. Лаптинский, П.С. Касьянова, А.Е. Томская, Т.А. Доленко. Опт. и спектр., 130 (6), 882 (2022). DOI: 10.21883/OS.2022.06.52630.36-22
  9. S. Zhu, Y. Song, J. Wang, H. Wan, Y. Zhang, Y. Ning, B. Yang. Nano Today, 13, 10 (2017). DOI: 10.1016/j.nantod.2016.12.006
  10. X. Miao, D. Qu, D. Yang, B. Nie, Y. Zhao, H. Fan, Z. Sun. Adv. Mater., 30 (1), 1704740 (2017). DOI: 10.1002/adma.201704740
  11. J. Yu, C. Liu, K. Yuan, Z. Lu, Y. Cheng, L. Li, X. Zhang, P. Jin, F. Meng, H. Liu. Nanomaterials, 8 (4), 233 (2018). DOI: 10.3390/nano8040233
  12. Q. Zhang, R. Wang, B. Feng, X. Zhong, K. Ostrikov. Nature Commun., 12 (1) (2021). DOI: 10.1038/s41467-021-27071-4
  13. C. Liu, F. Zhang, J. Hu, W. Gao, M. Zhang. Front. Chem., 8 (2021). DOI: 10.3389/fchem.2020.605028
  14. A.M. Vervald, A.V. Lachko, O.S. Kudryavtsev, O.A. Shenderova, S.V. Kuznetsov, I.I. Vlasov, T.A. Dolenko. J. Phys. Chem. C, 125, (33), 18247 (2021). DOI: 10.1021/acs.jpcc.1c03331
  15. Y. Su, Z. Xie, M. Zheng. J. Coll. Interface Sci., 573, 241 (2020). DOI: 10.1016/j.jcis.2020.04.004
  16. A.O. da Silva, M.O. Rodrigues, M.H. Sousa, A.F.C. Campos. Coll. Surf. A, 621, 126578 (2021). DOI: 10.1016/j.colsurfa.2021.126578
  17. J. Ren, F. Weber, F. Weigert, Y. Wang, S. Choudhury, J. Xiao, I. Lauermann, U. Resch-Genger, A. Bande, T. Petit. Nanoscale, 11, (4), 2056 (2019). DOI: 10.1039/C8NR08595A
  18. Lu P.-J. World. J. Gastroenterol., 16 (43), 5496 (2010). DOI: 10.3748/wjg.v16.i43.5496
  19. T. Takeshima, M. Adler, M. Nacchiero, J. Rudick, D.A. Dreiling. Am. J. Gastroenterol, 67 (1), 54 (1977)
  20. Bordwell pKa Table: https://organicchemistrydata.org/ hansreich/resources/pka/\#pka_general (2021)
  21. F. Menges. Spectragryph --- optical spectroscopy software. Version 1.2.15 (2020). http://www.effemm2.de/spectragryph/
  22. J.R. Lakowicz. Principles of Fluorescence Spectroscopy (Springer, 2006)
  23. K.A. Laptinskiy, S.A. Burikov, S.V. Patsaeva, I.I. Vlasov, O.A. Shenderova, T. A. Dolenko. Spectrochim. Acta A, 229, 117879 (2020). DOI: 10.1016/j.saa.2019.1178793
  24. D.F. Eaton. Pure Appl. Chem., 60, 1107 (1988)
  25. P. Zhou, Z. Tang, P. Li, J. Liu. J. Phys. Chem. Lett., 12 (28), 6478 (2021). DOI: 10.1021/acs.jpclett.1c01774

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.