Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2022, выпуск 5 » Статья стр. 761
<<<>>>
Фотоокисление тетрагидробиоптерина как основа фототерапии витилиго
DOI: 10.21883/OS.2022.05.52432.14-22
Переводная версия: 10.21883/EOS.2022.05.54446.14-22
Российский научный фонд, 20-73-10029
Казанский (Приволжский) федеральный университет, Программа стратегического академического лидерства
Телегина Т.А. 1,2, Вечтомова Ю.Л. 1, Крицкий М.С. 1, Низамутдинов А.С.3, Мадиров Э.И. 2,3, Макарова Д.А.3, Буглак А.А. 2
1Институт биохимии им. А.Н. Баха, Федеральный исследовательский центр "Фундаментальные основы биотехнологии" РАН, Москва, Россия
2Санкт-Петербургский государственный университет, Санкт-Петербург, Россия
3Казанский федеральный университет, Казань, Россия
Email: telegina.43@mail.ru, vechtomova@inbi.ras.ru, mkritsky@inbi.ras.ru, anizamutdinov@mail.ru, ed.madirov@gmail.com, makarovadaryaaa@mail.ru, andreybuglak@gmail.com
Поступила в редакцию: 23 января 2022 г.
В окончательной редакции: 7 февраля 2022 г.
Принята к печати: 10 февраля 2022 г.
Выставление онлайн: 7 апреля 2022 г.
PDF версия
Исследована кинетика фотоокисления тетрагидробиоптерина, вычислены квантовые выходы образования димеров дигидроптерина при использовании в качестве источников УФ излучения: ксеноновой лампы, перестраиваемого УФ лазера и УФ светодиода. На основании сравнительного анализа эффективности этих источников излучения при проведении процесса фотоокисления тетрагидробиоптерина сделано заключение об эффективности УФ светодиодных источников с максимумом испускания в области 325 nm для целей фототерапии витилиго. Ключевые слова: витилиго, тетрагидробиоптерин, меланин, окислительный стресс, H2O2, УФ фототерапия витилиго.
  1. H.K. Cho, L.Y. Eun, J.S. Song, W.H. Kang, B.I. Ro. Ann. Dermatol, 21 (1), 75 (2009). DOI: 10.5021/ad.2009.21.1.75
  2. J.M. Park, H.J. Kim, B.G. Bae, Y.K. Park. Ann. Dermatol, 21 (3), 330 (2009). DOI: 10.5021/ad.2009.21.3.330
  3. K. Hedayat, M. Karbakhsh, M. Ghiasi, A. Goodarzi, Y. Fakour, Z. Akbari, A. Ghayoumi, N. Ghandi Health Qual. Life Outcomes, 14, 86 (2016). DOI: 10.1186/s12955-016-0490-y
  4. M.A. Morales-Sanchez, M. Vargas-Salinas, M.L. Peralta-Pedrero, M.G. Olguin-Garcia, F. Jurado-Santa Cruz. Actas Dermosifiliogr., 108 (7), 637 (2017). DOI: 10.1016/j.ad.2017.03.007
  5. K.U. Schallreuter, J.M. Wood, M.R. Pittelkow, M. Gutlich, K.R. Lemke, W. Rodl, N.N. Swanson, K. Hitzemann, I. Ziegler. Science, 263(5152), 1444 (1994). DOI: 10.1126/science.8128228
  6. K.U. Schallreuter, J. Moore, J.M. Wood, W.D. Beazley, E.M. Peters, L.K. Marles, S.C. Behrens-Williams, R. Dummer, N. Blau, B. Thony. J. Invest. Dermatol, 116 (1), 167 (2001). DOI: 10.1046/j.1523-1747.2001.00220
  7. R. Bidaki, N. Majidi, A. Moghadam Ahmadi, H. Bakhshi, R. Sadr Mohammadi, S.A. Mostafavi, M. Kazemi Arababadi, M. Hadavi, A. Mirzaei. Clin. Cosmet. Investig. Dermatol, 11, 383 (2018). DOI: 10.2147/CCID.S151114
  8. H. Xie, F. Zhou, L. Liu, G. Zhu, Q. Li, C. Li, T. Gao. J. Dermatol. Sci., 81 (1), 3 (2016). DOI: 10.1016/j.jdermsci.2015.09.003
  9. Y. He, S. Li, W. Zhang, W. Dai, T. Cui, G. Wang, T. Gao, Ch. Li. Sci. Rep., 7, 42394 (2017). DOI: 10.1038/srep42394
  10. S. Benito-Martinez, L. Salavessa, G. Raposo, M.S. Marks, C. Delevoye. Integr. Comp. Biol., 61 (4), 1546 (2021). DOI: 10.1093/icb/icab094
  11. J. Sandby-Mller, T. Poulsen, H.C. Wulf. Acta Derm. Venereol., 83 (6), 410 (2003). DOI: 10.1080/00015550310015419
  12. N.G. Jablonski. Annu. Rev. Anthropol., 33 (1), 585 (2004). DOI: 10.1146/annurev.anthro.33.070203.143955
  13. S. Hasse, N.C. Gibbons, H. Rokos, L.K. Marles, K.U. Schallreuter. J. Invest. Dermatol. V., 122 (2), 307 (2004). DOI: 10.1046/j.0022-202X.2004.22230.x
  14. J.D. Spencer, N.C. Gibbons, H. Rokos, E.M. Peters, J.M. Wood, K.U. Schallreuter. J. Invest. Dermatol., 127 (2), 411 (2007). DOI: 10.1038/sj.jid.5700538
  15. M. Eskandani, J. Golchai, N. Pirooznia, S. Hasannia. Indian J. Dermatol., 55 (1), 15 (2010). DOI: 10.4103/0019-5154.60344
  16. K.U. Schallreuter, M.A. Salem, S. Holtz, A. Panske. FASEB J., 27(8), 3113 (2013). DOI: 10.1096/fj.12-226779
  17. S. Kaufman. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 50 (6), 1085 (1963). DOI: 10.1073/pnas.50.6.1085
  18. M.D. Davis, S. Kaufman. J. Biol. Chem., 264(15) 8585 (1989)
  19. M.L. Dantola, L.O. Reid, C. Castano, C. Lorente, E. Oliveros, A.H. Thomas. Pteridines, 28 (3-4), 105 (2017). DOI: 10.1515/pterid-2017-0013
  20. H. Ko, M.M. Kim. Mol. Biol. Rep., 46, 2461 (2019). DOI: 10.1007/s11033-019-04708-8
  21. J. Yuan, Y. Lu, H. Wang, Y. Feng, S. Jiang, X-H. Gao, R. Qi, Y. Wu, H-D. Chen. Front. Pharmacol., 11, 536 (2020). DOI: 10.3389/fphar.2020.00536
  22. R. An, D. Li, Y. Dong, Q. She, T. Zhou, X. Nie, R. Pan, Y. Deng. Drug. Des. Devel. Ther., 15, 4837 (2021). DOI: 10.2147/DDDT.S336066
  23. D.J. Gawkrodger. Br. J. Dermatol., 161 (4), 721 (2009). DOI: 10.1111/j.1365-2133.2009.09292.x
  24. T.A. Telegina, T.A. Lyudnikova, A.A. Buglak, Y.L. Vechtomova, M.V. Biryukov, V.V. Demin, M.S. Kritsky. J. Photochem. Photobiol. A, 354, 155 (2018). DOI: 10.1016/j.jphotochem.2017.07.029
  25. Т.А. Телегина, Ю.Л. Вечтомова, М.С. Крицкий, Э.И. Мадиров, А.С. Низамутдинов, Ю.Н. Обухов, А.А. Буглак. Прикл. биохим. Микробиол., 57 (5), 441 (2021). DOI: 10.31857/S0555109921050160 [T.A. Telegina, Y.L. Vechtomova, M.S. Kritsky, E.I. Madirov, A.S. Nizamutdinov, Y.N. Obuhov, A.A. Buglak. Appl. Biochem. Microbiol., 57 (5), 571 (2021). DOI: 10.1134/S000368382105015X]
  26. A.S. Nizamutdinov, V.V. Semashko, A.K. Naumov, S.L. Korableva, M.A. Marisov, V.N. Efimov, L.A. Nurtdinova. Proc. SPIE, 7994, 79940H (2011). DOI: 10.1117/12.881885
  27. I.I. Farukhshin, A.S. Nizamutdinov, S.L. Korableva, V.V. Semashko. Opt. Mater. Express, 6 (4), 1131 (2016). DOI: 10.1364/OME.6.001131
  28. M.A. Dubinskii, V.V. Semashko, A.K. Naumov, R.Yu. Abdulsabirov, S.L. Korableva. J. Modern Opt., 40 (1), 1 (1993) DOI: 10.1080/09500349314550011
  29. A.A. Buglak, T.A. Telegina, T.A. Lyudnikova, Y.L. Vechtomova, M.S. Kritsky. Photochem. Photobiol., 90 (5), 1017 (2014). DOI: 10.1111/php.12285
  30. A.A. Buglak, T.A. Telegina, E.A. Vorotelyak, A.I. Kononov. J. Photochem. Photobiol. A, 372, 254 (2019). DOI: 10.1016/j.jphotochem.2018.12.002
  31. A.A. Buglak, T.A. Telegina, Y.L. Vechtomova, M.S. Kritsky. Free Radic. Res., 55 (5), 499 (2021). DOI: 10.1080/10715762.2020.1860213
  32. Alberto Boretti, Bimal Banic, Stefania Castelletto. Clinical Reviews in Allergy and immunology, 60, 259-270 (2021). DOI: 10.1007/s12016-020-08811-8
  33. S. Ratnesar-Shumate, G. Williams, B. Green, M. Krause, B. Holland, S. Wood, J. Bohannon, J. Boydston, D. Freeburger, I. Hooper, K. Beck, J. Yeager, L.A. Altamura, J. Biryukov, J. Yolitz, M. Schuit, V. Wahl, M. Hevey, P. Dabisch. J. Infect. Dis., 222 (2), 214 (2020). DOI: 10.1093/infdis/jiaa274
  34. S. Shibuya, Y. Ozawa, K. Watanabe, N. Izuo, T. Toda, K. Yokote, T. Shimizu. PLoS One, 9 (10), e109288 (2014). DOI: 10.1371/journal.pone.0109288

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2024 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme