Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2020, выпуск 6 » Статья стр. 840
<<<>>>
Фототермическое действие инфракрасного (808 nm) лазерного излучения и наночастиц золота в различных модификациях на S. aureus
DOI: 10.21883/OS.2020.06.49418.49-20
Переводная версия: 10.1134/S0030400X20060223
Тучина Е.С.1, Тучин В.В.1
1Саратовский национальный исследовательский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского, Саратов, Россия
Email: kliany@rambler.ru
Выставление онлайн: 3 апреля 2020 г.
PDF версия
Проведено сравнительное исследование влияния инфракрасного лазерного излучения (808 nm) разной плотности мощности на бактерии Staphylococcus aureus 209 P, инкубированных в растворах золотых нанокубиков, наностержней и на поверхности стекол с покрытием из золотых нанодисков. Излучение с плотностью мощности 60 mW/сm2 в комбинации с нанокубиками вызывало гибель 50% бактериальной популяции после 30 min воздействия, а в комбинации с нанострежнями - 56%. Повышение температуры взвесей после облучения отмечено не более чем на 5-6oC. Излучение с плотностью мощности 400 mW/сm2 обусловливало выраженное угнетение жизнеспособности бактериальных клеток на 81% после 30 min. Инкубация взвесей микроорганизмов на поверхности стекол, содержащих золотые нанодиски, в ходе облучения (808 nm, 400 mW/сm2) приводила к 99% гибели бактериальных клеток. Ключевые слова: фототермическое действие, золотые наночастицы, инфракрасное лазерное излучение, микроорганизмы, S. aureus.
  1. Huang Y.Y., Sharma S.K., Carroll J., Hamblin M.R. // Response. 2011. V. 9. P. 602. doi 10.2203/dose-response.11-009.Hamblin
  2. Yin R., Agrawa T., Khan U., Gupta G.K., Rai V., Huang Y.-Y., Hamblin M.R. // Nanomedicine (Lond). 2015. V. 10. N 15. P. 2379. doi 10.2217/nnm.15.67
  3. Hamblin M.R. // Current Opinion in Microbiology. 2016. V. 33. P. 67. doi 10.1016/j.mib.2016.06.008
  4. Karimi M., Zangabad P.S., Ghasemi A., Amiri M., Bahrami M., Malekzad H., Asl H.G., Mahdieh Z., Bozorgomid M., Ghasemi A., Reza M., Boyuk R.T., Hamblin M.R. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2016. V. 8. P. 21107. doi 10.1021/acsami.6b00371
  5. Wainwright M., Maish T., Nonell S., Plaetzer K., Almeida A., Tegos G., Hamblin M.R. The Lancet Infectious Disease. 2017. V. 17. N 2. P. 49. doi 10.1016/S1473-3099(16)30268-7
  6. Hamblin M.R. // AIMS Biophys. 2017. V. 4. P. 337. doi 10.3934/biophy.2017.3.337
  7. Tsai S.R., Hamblin M.R. // J. Photochem. Photobiol. B. 2017. V. 170. P. 197. doi 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.014
  8. Dasari S., Zhang Y., Yu H. // Biochem. Pharmacol. 2015. V. 4. N 6. P. 199. doi 10.4172/2167-0501.1000199
  9. Penders J., Stolzoff M., Hickey D.J., Andersson M., Webster T.J. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 2457. doi 10.2147/IJN.S124442
  10. Khlebtsov B., Zharov V., Melnikov A., Tuchin V., Khlebtsov N. // Nanotechnology. 2006. V. 17. P. 5167. doi 10.1088/0957-4484/17/20/022
  11. Тучина Е.С., Тучин В.В., Хлебцов Б.Н., Хлебцов Н.Г. // Квант. электроника. 2011. Т. 41. C. 354
  12. Mahmoud N.N., Alkilany A.M., Khalil E.A., Al-Bakri A.G. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 7311. doi 10.2147/IJN.S145531
  13. Mohamed M.M., Fouad S.A., Elshoky H.A., Mohammed G.M, Salaheldin T.A. // Int. J. Veterinary Science and Medicine. 2017. V. 5. N 1. P. 23. doi 10.1016/j.ijvsm.2017.02.003
  14. Mocan L., Tabaran F.A., Mocan T., Pop T., Mosteanu O., Agoston-Coldea L., Matea C.T., Gonciar D., Zdrehus C., Iancu C. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 2255. doi 10.2147/IJN.S124778
  15. Amendola V., Pilot R., Frasconi M., Marag\`o O.M., Iati M.A. // J. Physics: Condenser. Matter. 2017. V. 29. N 20. P. 3. doi 10.1088/1361-648X/aa60f3
  16. Tuchina E.S., Petrov P.O., Ratto F., Centi S., Pini R., Tuchin V.V. // Proc. SPIE 9324: Biophotonics and Immune Responses X. 2015. V. 93240X. P. 1. doi 10.1117/12.2078687
  17. Skrabalak S.E., Au L., Li X., Xia Y. // Nat. Protoc. 2007. V. 2. P. 2182. doi 10.1038/nprot.2007.326
  18. Ratto F., Matteini P., Centi S., Rossi F., Pini R. // J. Biophoton. 2011. V. 4. P. 64
  19. Arnob M.P., Zhao F., Li J., Shih W.C. // ACS Photonics. 2017. V. 4. N 8. P. 1870. doi 10.1021/acsphotonics.7b00239
  20. Verrips C.T., Van Rhee R. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V. 41. P. 1128
  21. Missiakas D., Schneewind O. // Curr. Protoc. Microbiol. 2013. V. 9. P. 1. doi 10.1002/9780471729259.mc09c01s28
  22. Embleton M.L., Nair S.P., Cookson B.D., Wilson M. // Microb. Drug. Resist. 2004. V. 10. P. 92. doi 10.1089/1076629041310000
  23. Тучин В.В. Лазеры и волоконная оптика в биомедицинских исследованиях. 2-е издание. М: Физматлит, 2010. C. 76
  24. Williams D.N., Ehrman S.H., Holoman T.R.P. // J. Nanobiotechnol. 2006. V. 4. N 3. P. 1. doi 10.1186/1477-3155-4-3
  25. Huang W.-C., Tsai P.-J., Chen Y.-C. // Nanomedicine. 2007. V. 2. P. 777. doi 10.2217/17435889.2.6.777
  26. Kuo W., Chang C.N., Chang Y.T., Yeh C.S. // Chem. Сommun. 2009. V. 32. P. 4853. doi 10.1039/b907274h
  27. Avetisyan Yu.A, Yakunin A.N., Tuchin V.V. // J. Biomed. Opt. 2015. V. 20. N 5. P. 30. doi 10.1117/1.jbo.20.5.051030
  28. Yakunin A.N., Zarkov S.V., Avetisyan Yu.A., Akchurin G.G., Akchurin G.G. Jr., Tuchina E.S., Tuchin V.V. // Proc. of SPIE: SFM-2019. 2019. V. 4. P. 1. doi 10.1117/12.2531440
  29. Barboza L.L., Campos V.M.A., Magalhaes L.A.G., Paoli F., Fonseca A.S. // Brazilian J. Med. Biol. Research. 2015. V. 48. N 10. P. 945. doi 10.1590/1414-431X20154460
  30. Zharov V.P., Mercer K.E., Galitovskaya E.N., Smeltzer M.S. // J. Biophys. 2006. V. 90. P. 619. doi 10.1529/biophysj.105.061895
  31. Ungureanu C., Kroes R., Petersen W., Groothuis T.A.M., Ungureanu F., Janssen H., van Leeuwen F.W.B., Kooyman R.P.H., Manohar S., van Leeuwen T.G. // Nano Lett. 2011. V. 11. P. 1887
  32. Gao L., Liu R., Gao F., Wang Y., Jiang X., Gao X. // ACS Nano. 2014. V. 8. N 7. P. 7260. doi 10.1021/nn502325j
  33. Minai L., Yeheskely-Hayon D., Yelin D. // Sci. Rep. 2013. V. 1. N 3. P. 2146. doi 10.1038/srep02146
  34. Raza A., Hayat U., Rasheed T., Bilald M., Iqbale H.M.N. // J. Mater. Res. Technol. 2019. V. 8. N 1. P. 1497
  35. Darvin M.E., Gersonde I., Albrecht H., Zastrow L., Sterry W., Lademann J. // Laser Phys. Lett. 2007. V. 4. N 4. P. 318. doi 10.1002/lapl.200610113
  36. Darvin M.E., Meinke M.C., Sterry W., Lademann J. // J. Biomedical Optics. 2013. V. 18. N 6. P. 061230. doi 10.1117/1.JBO.18.6.061230
  37. Tuchina E.S., Ratto F., Khlebtsov B.N., Centi S., Matteini P., Rossi F., Fusi F., Khlebtsov N.G., Pini R., Tuchin V.V. // Proc. of SPIE: Plasmonics in Biology and Medicine VIII. 2011. V. 7911. P. 79111C-1. doi 10.1117/12.875122
  38. Khlebtsov B.N., Tuchina E. S., Tuchin V.V., Khlebtsov N.G. // RSC Adv. 2015. V. 5. P. 61639. doi 10.1039/C5RA11713E
  39. Korshed P., Li L., Lui Z., Mironov A., Wang T. // J. Interdisciplinary Nanomed. 2019. V. 4. N 1. P. 24. doi 10.1002/jin2.54
  40. Inam M., Foster J.C., Gao J., Hong Y., Du J., Dove A.P., O'Reilly R.K. // J. Polymer Sci. Inn. Award Winners. 2019. V. 57. N 3. P. 255. doi 10.1002/pola.29195
  41. Penders J., Stolzoff M., Hickey D.J., Andersson M., Webster T.J. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 2457. doi 10.2147/IJN.S124442
  42. Harun N.H., Mydin R.B., Sreekantan S., Saharudin K.A., Ling K.Y., Basiron F., Radhi F., Seeni A. // Mal. J. Med. Health Sci. 2018. V. 14. P. 141
  43. Cheon J.Y., Kim S.J., Rhee Y.H., Kwon O.H., Park W.H. // Int. J. Nanomedicine. 2019. V. 14. P. 2773
  44. Al-Bakri A.G., Mahmoud N.N. // Molecules. 2019. V. 24. N 14. P. 1. doi 10.3390/molecules24142661
  45. Khlebtsov N.G., Li L., Khlebtsov B.N., Ye J. // Theranostics. 2020. V. 10. N 5. P. 2067. doi 10.7150/thno.39968

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2025 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme