Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2020, выпуск 6 » Статья стр. 736
<<<>>>
Апробация тонкоигольного оптического зонда для регистрации изменений флуоресценции коферментов клеточного дыхания
DOI: 10.21883/OS.2020.06.49405.32-20
Переводная версия: 10.1134/S0030400X20060089
Российский научный фонд, Клинико-экспериментальное обоснование многопараметрической оптической биопсии органов гепатопанкреатодуоденальной зоны при малоинвазивных хирургических операциях, 18-15-00201
Кандурова К.Ю. 1, Потапова Е.В. 1, Жеребцов Е.А. 1,2, Дрёмин В.В. 1,2, Серёгина Е.С. 1, Винокуров А.Ю.3, Мамошин А.В. 1,4, Борсуков А.В. 5, Иванов Ю.В. 6,7, Дунаев А.В. 1
1Научно-технологический центр биомедицинской фотоники, Орловский государственный университет имени И.С. Тургенева, Орел, Россия
2University of Oulu, Oulu, Finland
3Кафедра промышленной химии и биотехнологии, Орловский государственный университет имени И.С. Тургенева, Орел, Россия
4Орловская областная клиническая больница, Орел, Россия
5Проблемная научно-исследовательская лаборатория "Диагностические исследования и малоинвазивные технологии", Смоленский государственный медицинский университет, Смоленск, Россия
6Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий ФМБА России, Москва, Россия
7Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, Москва, Россия
Email: kandkseniya@gmail.com, potapova_ev_ogu@mail.ru, zherebzow@gmail.com, dremin_viktor@mail.ru, e.s.seryogina@gmail.com, chemistry@ostu.ru, dr.mamoshin@mail.ru, bor55@yandex.ru, ivanovkb83@yandex.ru, dunaev@bmecenter.ru
Выставление онлайн: 3 апреля 2020 г.
PDF версия
Описано устройство для оптической биопсии с каналом флуоресцентной спектроскопии и тонкоигольным оптическим зондом для применения при тонкоигольной пункционно-аспирационной биопсии новообразований печени. Для апробации разработанного устройства проведены экспериментальные измерения флуоресценции внутренних органов лабораторной крысы in vivo при воздействии на поверхности тканей митохондриального разобщителя для индуцирования изменений клеточного дыхания. Полученные результаты постановочного эксперимента показали способность разработанного канала регистрировать изменения флуоресценции, обусловленные изменениями в процессах окислительного фосфорилирования митохондрий. Ключевые слова: оптическая биопсия, флуоресцентная спектроскопия, митохондриальные разобщители, НАДН, ФАД.
  1. The Cancer Atlas, 3rd edition. International Agency for Research on Cancer. 2019. [Электронный ресурс] Режим доступа: https://canceratlas.cancer.org
  2. Ferlay J., Soerjomataram I., Ervik M., Dikshit R., Eser S., Mathers C., Rebelo M., Parkin D.M., Forman D., Bray F. // Lyon, Fr. Int. agency Res. cancer. 2013
  3. Liver cancer fact sheet. Global Cancer Observatory, 2018. [Электронный ресурс] Режим доступа: http://gco.iarc.fr/today/fact-sheets-cancers
  4. Clark T., Maximin S., Meier J., Pokharel S., Bhargava P. // Curr. Probl. Diagn. Radiol. 2015. V. 44. N 6. P. 479. doi 10.1067/j.cpradiol.2015.04.004
  5. Valery P.C., Laversanne M., Clark P.J., Petrick J.L., McGlynn K.A., Bray F. // Hepatology. 2018. V. 67. N 2. P. 600. doi 10.1002/hep.29498
  6. Mahvi D.A., Mahvi D.M. // Abeloff's Clinical Oncology. 2020. P. 846
  7. Gharib H., Papini E., Paschke R., Duick D.S., Valcavi R., Hegedus L., Vitti P. // Endocrine Practice. 2010. V. 16. Suppl. 1. P. 1. doi 10.4158/EP.16.3.468
  8. Pitman M.B. // Clin. Lab. Med. 1998. V. 18. N 3. P. 483. doi 10.1016/S0272-2712(18)30160-4
  9. Wee A. // Patholog. Res. Int. 2011. V. 2011. 587936. doi 10.4061/2011/587936
  10. Chhieng D.C. // World J. Surg. Oncol. 2004. V. 2. N 1. P. 5. doi 10.1186/1477-7819-2-5
  11. Choi S.H., Han K.H., Yoon J.H., Moon H.J., Son E.J., Youk J.H., Kim E., Kwak J.Y. // Clin. Endocrinol. (Oxf). 2011. V. 74. N 6. P. 776. doi 10.1111/j.1365-2265.2011.04011.x
  12. Gomez-Macias G.S., Garza-Guajardo R., Segura-Luna J., Barboza-Quintana O. // Cytojournal. 2009. V. 6. P. 9. doi 10.4103/1742-6413.52831
  13. Kalogeraki A., Papadakis G.Z., Tamiolakis D., Karvela-Kalogeraki I., Karvelas-Kalogerakis M., Segredakis J., Moustou E. // Rom. J. Intern. Med. 2015. V. 53. N 3. P. 209. doi 10.1515/rjim-2015-0028
  14. Alfano R., Pu Y. // Lasers for Medical Applications. 2013. P. 325
  15. Кандурова К.Ю., Дрёмин В.В., Жеребцов Е.А., Альянов А.Л., Мамошин А.В., Потапова Е.В., Дунаев А.В., Мурадян В.Ф., Сидоров В.В., Крупаткин А.И. // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2018. Т. 17. N 3. С. 71; Kandurova K.Y., Dremin V.V., Zherebtsov E.A., Alyanov A.L., Mamoshin A.V., Potapova E.V., Dunaev A.V., Muradyan V.F., Sidorov V.V., Krupatkin A.I. // Regional Blood Circulation and Microcirculation. 2018. V. 17. N 3. P. 71. doi 10.24884/1682-6655-2018-17-3-71-79
  16. Wang T.D., Van Dam J. // Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2004. V. 2. N 9. P. 744. doi 10.1016/S1542-3565(04)00345-3
  17. Тучин В.В. Оптическая биомедицинская диагностика: в 2-х т. / Учебное издание. М.: ФИЗМАТЛИТ, 2007. Т. 1. 559 с
  18. Kennedy G.T., Okusanya O.T., Keating J.J., Heitjan D.F., Deshpande C., Litzky L.A., Albelda S.M., Drebin J.A., Nie S., Low P.S., Singhal S. // Ann. Surg. 2015. V. 262. N 4. P. 602. doi 10.1097/SLA.0000000000001452
  19. Alchab L., Dupuis G., Balleyguier C., Mathieu M., Fontaine-Aupart M., Farcy R. // J. Biophotonics. 2010. V. 3. N 5-6. P. 373. doi 10.1002/jbio.200900070
  20. Mayevsky A., Walden R., Pewzner E., Deutsch A., Heldenberg E., Lavee J., Tager S., Kachel E., Raanani E., Preisman S., Glauber V., Segal E. // J. Biomed. Opt. 2011. V. 16. N 6. Р. 067004. doi 10.1117/1.3585674
  21. Evers D.J., Nachabe R., Hompes D., Van Coevorden F., Lucassen G.W., Hendriks B.H.W., van Velthuysen M.-L., Wesseling J., Ruers T.J.M. // Eur. J. Surg. Oncol. 2013. V. 39. N 1. P. 68. doi 10.1016/j.ejso.2012.08.005
  22. Spliethoff J.W., Prevoo W., Meier M.A.J., de Jong J., Klomp H.M., Evers D.J., Sterenborg H.J.C.M., Lucassen G.W., Hendriks B.H.W., Ruers T.J.M. // Clin. Cancer Res. 2016. V. 22. N 2. P. 357. doi 10.1158/1078-0432.CCR-15-0807
  23. Tanis E., Evers D.J., Spliethoff J.W., Pully V.V., Kuhlmann K., van Coevorden F., Hendriks B.H.W., Sanders J., Prevoo W., Ruers T.J.M. // Lasers Surg. Med. 2016. V. 48. N 9. P. 820. doi 10.1002/lsm.22581
  24. Kandurova K., Potapova E., Shupletsov V., Kozlov I., Seryogina E., Dremin V., Zherebtsov E., Alekseyev A., Mamoshin A., Dunaev A. // Proc. SPIE. 2019. V. 11079. Р. 110791C. doi 10.1117/12.2526747
  25. Croce A.C., Bottiroli G. // Eur. J. Histochem. 2014. V. 58. N 4. P. 320. doi 10.4081/ejh.2014.2461
  26. Rafailov I.E., Dremin V.V., Litvinova K.S., Dunaev A.V., Sokolovski S.G., Rafailov E.U. // J. Biomed. Opt. 2016. V. 21. N 2. Р. 025006. doi 10.1117/1.JBO.21.2.025006
  27. Harris K., Rohrbach D.J., Attwood K., Qiu J., Sunar U. // J. Thorac. Dis. 2017. V. 9. N 5. P. 1386. doi 10.21037/jtd.2017.03.113
  28. Braun F., Schalk R., Nachtmann M., Hien A., Frank R., Beuermann T., Methner F.-J., Kranzlin B., Radle M., Gretz N. // Meas. Sci. Technol. V. 30. N 10. Р. 104001. doi 10.1088/1361-6501/ab24a1
  29. Mathieu M.-C., Toullec A., Benoit C., Berry R., Validire P., Beaumel P., Vincent Y., Maroun P., Vielh P., Alchab L. // Eur. Radiol. 2018. V. 28. N 6. P. 2507. doi 10.1007/s00330-017-5228-7
  30. Spliethoff J.W., Evers D.J., Jaspers J.E., Hendriks B.H.W., Rottenberg S., Ruers T.J.M. // Transl. Oncol. 2014. V. 7. N 2. doi 0.1016/j.tranon.2014.02.009
  31. Vo-Dinh T. Biomedical Photonics Handbook: Biomedical Diagnostics. CRC Press, 2014. 889 p
  32. Mayevsky A., Rogatsky G.G. // Am. J. Physiol. Physiol. 2007. V. 292. N 2. P. C615. doi 10.1152/ajpcell.00249.2006
  33. Papayan G., Petrishchev N., Galagudza M. // Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2014. V. 11. N 3. P. 400. doi 10.1016/j.pdpdt.2014.05.003
  34. Лукина М.М., Ширманова М.В., Сергеева Т.Ф., Загайнова Е.В. // Современные технологии в медицине. 2016. Т. 8. N 4. С. 113; Lukina M.M., Shirmanova M.V., Sergeeva T.F., Zagaynova Е.V. // Sovremennye Tehnologii v Medicine. 2016. V. 8. N 4. P. 113. doi 10.17691/stm2016.8.4.16
  35. Heikal A.A. // Biomark. Med. 2010. V. 4. N 2. P. 241. doi 10.2217/bmm.10.1
  36. Koenig K., Schneckenburger H. // J. Fluoresc. 1994. V. 4. P. 17-40. doi 10.1007/BF01876650
  37. Wang D., Chen Y., Liu J.T.C. // Biomed. Opt. Express. 2012. V. 3. N 12. P. 3153. doi 10.1364/BOE.3.003153
  38. Логинова Д.А., Сергеева Е.А., Крайнов А.Д., Агрба П.Д., Кириллин М.Ю. // Квант. электрон. 2016. Т. 46. N 6. С. 528; Loginova D.A., Sergeeva E.A., Krainov A.D., Agrba P.D., Kirillin M.Y. // Quantum Electron. 2016. V. 46. N 6. P. 528. doi 10.1070/QEL16133
  39. Потапова Е.В., Дрёмин В.В., Жеребцов Е.А., Подмастерьев К.В., Дунаев А.В. // Фундаментальные и прикладные проблемы техники и технологии. 2018. Т. 331. N 5. С. 105. doi 10.1002/1873-3468.12964
  40. Foster K.A., Beaver C.J., Turner D.A. // Neuroscience. 2005. V. 132. N 3. P. 645. doi 10.1016/j.neuroscience.2005.01.040
  41. Zherebtsov E., Angelova P., Sokolovski S., Abramov A., Rafailov E. // Proc. SPIE. 2018. V. 10685. P. 106854E. doi 10.1117/12.2307552
  42. Kim Y.J., Mizushima S., Tokuda H. // J. Biochem. 1991. V. 109. N 4. P. 616. doi 10.1093/oxfordjournals.jbchem.a123429
  43. Takahashi E., Endoh H., Ishikawa M., Kishi M., Doi K. // Oxygen Transport to Tissue XXIV. 2003. P. 565. doi 10.1007/978-1-4615-0075-9\_54
  44. Drozdowicz-Tomsia K., Anwer A.G., Cahill M.A., Madlum K.N., Maki A.M., Baker M.S., Goldys E.M. // J. Biomed. Opt. 2014. V. 19. N 8. P. 86016. doi 10.1117/1.JBO.19.8.086016
  45. Bartolome F., Abramov A.Y. // Methods Mol. Biol. 2015. V. 1264. P. 263. doi 10.1007/978-1-4939-2257-4\_23
  46. Weissig V., Edeas M. Mitochondrial Medicine. V. 1. Humana Press, 2015. 480 p. doi 10.1007/978-1-4939-2257-4
  47. Mottin S., Laporte P., Cespuglio R. // Neurochem. 2003. V. 84. N 4. P. 633. doi 10.1046/j.1471-4159.2003.01508.x
  48. Dremin V., Potapova E., Zherebtsov E., Kozlov I., Seryogina E., Kandurova K., Alekseyev A., Piavchenko G., Kuznetsov S., Mamoshin A., Dunaev A. // Proc. SPIE. 2019. V. 108770. P. 108770K. doi 10.1117/12.2509255
  49. Lakowicz J.R. Principles of Fluorescence Spectroscopy. Springer Science \& Business Media, 2013. 698 p
  50. The International Commission on Non-Ionizing Radiation Protection // Health Phys. 2004. V. 87. N 2. P. 171. doi 10.1097/00004032-200408000-00006
  51. Dremin V.V., Zherebtsov E.A., Sidorov V.V., Krupatkin A.I., Makovik I.N., Zherebtsova A.I., Zharkikh E.V., Potapova E.V., Dunaev A.V., Doronin A.A., Bykov A.V., Rafailov I.E., Litvinova K.S., Sokolovski S.G., Rafailov E.U. // J. Biomed. Opt. 2017. V. 22. N 8. P. 085003. doi 10.1117/1.JBO.22.8.085003
  52. Плакунов В., Николаев Ю. Основы динамической биохимии. Логос, 2017. 216 c
  53. Sivandzade F., Bhalerao A., Cucullo L. // Bio-protocol. 2019. V. 9. N 1. P. e3128. doi 10.21769/BioProtoc.3128
  54. Vargas G., Chan K.F., Thomsen S.L., Welch A.J. // Lasers Surg. Med. 2001. V. 29. N 3. P. 213. doi 10.1002/lsm.1110
  55. Bui A.K., McClure R.A., Chang J., Stoianovici C., Hirshburg J., Yeh A.T., Choi B. // Lasers Surg. Med. 2009. V. 41. N 2. P. 142. doi 10.1002/lsm.20742
  56. Capriotti K., Capriotti J.A. // J. Clin. Aesthet. Dermatol. 2012. V. 5. N 9. P. 24
  57. Marren K. // Phys. Sportsmed. 2011. V. 39. N 3. P. 75. doi 10.3810/psm.2011.09.1923
  58. Pelzel H.R., Schlamp C.L., Waclawski M., Shaw M.K., Nickells R.W. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2012. V. 53. N 3. P. 1428. doi 10.1167/iovs.11-8872
  59. Rojas J.C., Saavedra J.A., Gonzalez-Lima F. // Brain Res. 2008. V. 1215. P. 208. doi 10.1016/j.brainres.2008.04.001
  60. Hanslick J.L., Lau K., Noguchi K.K., Olney J.W., Zorumski C.F., Mennerick S., Farber N.B. // Neurobiol. Dis. 2009. V. 34. N 1. P. 1. doi 10.1016/j.nbd.2008.11.006
  61. Yu Z.W., Quinn P.J. // Biosci. Rep. 1994. V. 14. N 6. P. 259. doi 10.1007/BF01199051
  62. Galvao J., Davis B., Tilley M., Normando E., Duchen M.R., Cordeiro M.F. // FASEB J. 2014. V. 28. N 3. P. 1317. doi 10.1096/fj.13-235440
  63. Kirkpatrick N.D., Zou C., Brewer M.A., Brands W.R., Drezek R.A., Utzinger U. // Photochem. Photobiol. 2005. V. 81. N 1. P. 125
  64. Danylovych H.V. // Ukr. Biochem. J. 2016. V. 88. N 1. P. 31. doi 10.15407/ubj88.01.031

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2024 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme