Вышедшие номера
Исследование взаимодействия между бычьим сывороточным альбумином и молекулами галогенпроизводных флуоресцеина в анионных обратных мицеллах
Кулешова А.А.1, Салецкий А.М. 1
1Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова (физический факультет), Москва, Россия
Email: kuleshova@physics.msu.ru, sam@physics.msu.ru
Поступила в редакцию: 8 июля 2025 г.
В окончательной редакции: 11 октября 2025 г.
Принята к печати: 11 марта 2026 г.
Выставление онлайн: 30 апреля 2026 г.

Исследовано влияние пространственного ограничения в обратных мицеллах (ОМ) на спектрально-флуоресцентные характеристики молекул эозина (E), эритрозина (ER), бенгальского розового (RB), бычьего сывороточного альбумина (BSA) и их смесей. Установлено, что размер обратных мицелл (их гидродинамический радиус Rh) влияет на спектрально-люминесцентные характеристики как BSA, так и молекул красителей (МК). При этом микроокружение остатков тирозина в BSA при изменении Rh не претерпевает явных изменений, в то время как уменьшение радиуса мицелл приводит к увеличению интенсивности флуоресценции остатков триптофана. Для МК пространственное ограничение в водных пулах мицелл сказывается на изменении дипольного момента молекул при их возбуждении. Экспериментально получены зависимости коэффициента тушения флуоресценции BSA (KSV) МК и определено, что для исследованных красителей данная характеристика отличается для мицеллярных растворов по сравнению с буферными. Константы статического тушения (KS) для комплексов в мицеллах в исследованной области их гидродинамических радиусов на два порядка меньше, чем константа Штерна-Фольмера (KSV) для водных растворов. Значения KS уменьшаются в ряду E->ER->BR, что обусловлено конформационными изменениями структуры молекул в этом ряду, связанными с перераспределением зарядов на атомах молекул. Динамическое тушение флуоресценции, являющееся основным, обусловлено переносом энергии электронного возбуждения с BSA на МК. Эффективность переноса электронного возбуждения увеличивается с уменьшением Rh. Ключевые слова: обратные мицеллы, флуоресценция, флуоресцентные красители, сывороточный альбумин, галогенпроизводные флуоресцеина.
  1. L. Wang, W. Zhang, Yu. Shao, D. Zhang, G. Guo, X. Wang. Anal. Chim. Acta, 1219, 340012 (2022)
  2. X.J. Guo, X.D. Sun, S.K. Xu. J. Molec. Structure, 931, 55-59 (2009)
  3. M. Makarska-Bialokoz. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy, 184, 262-269 (2017)
  4. Rodrigues dos Santos, G.G. Delgado, Thyerre Santana da Costa, L. Tasic. BBA Advances, 3, 100091 (2023)
  5. Д.С. Тарасов, М.П. Самцов, И.И. Хлудеев, Е.В. Малюшкова, И.В. Семак. Журнал прикладной спектроскопии, 89 (5), 605-613 (2022)
  6. Е.С. Городничев, А.А. Кулешова, А.В. Быков, А.М. Салецкий. Журнал прикладной спектроскопии, 86 (5), 772-777 (2019)
  7. A. Rahdar, M. Almasi-Kashi, A.M. Khan, M. Aliahmad, A. Salimi, M. Guettari, H.E.G. Kohne. J. Molecular Liquids, 252, 506-513 (2018)
  8. S.K. Dhillon, S.L. Porter, N. Rizk, Y. Sheng, Th. McKaig, K. Burnett, B. White, H. Nesbitt, R.N. Matin, A.P. McHale, B. Callan, J.F. Callan. J. Med. Chem., 63, 1328-1336 (2020)
  9. A. Naranjo, A. Arboleda, J.D. Martinez, H. Durkee, C. Aguilar, N. Relhan, N. Nikpoor, A. Galor, S.R. Dubovy, R. Leblanc, H.W. Flynn, D. Miller, Jean-Marie Parel, G. Amescua. Am. J. Ophthalmology, 208, 387-396 (2019)
  10. K. Shitomi, H. Miyaji, S. Miyata, T. Sugaya, N. Ushijima, T. Akasaka, H. Kawasaki. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy, 30, 101647 (2020)
  11. С.Н. Летута, С.Н. Пашкевич, А.Т. Ишемгулов, А.Н. Никиян. Биофизика, 65 (4), 705-712 (2020)
  12. О.И. Волкова, А.А. Кулешова, Б.Н. Корватовский, А.М. Салецкий. Опт. и спектр., 128, 1842-1848 (2020)
  13. A.V. Potapov, D.B. Alekseev, I.G. Alekseeva, A.M. Saletsky. Laser Phys. Lett., 4, 61-65 (2007)
  14. E.S. Gorodnichev, A.A. Kuleshova, O.I. Volkova, A.M. Saletsky. Laser Physics, 31 (6), 065601 (2021)
  15. Y. Feng, W. Liu, R. Mercade-Prieto, X. Dong. Chem. J. Photochem. Photobiol. A: Chemistry, 408, 113092 (2021)
  16. S. Salgi n, U. Salgi n, S. Bahadi r. Int. J. Electrochem. Sci., 7 (12), 12404-12414 (2012)
  17. B. Jachimska, M. Wasilewska, Z. Adamczyk. Langmuir, 24, 6866-6872 (2008)
  18. P.L. Luisi, M. Giomirfi, M.P. Hleni, B.H. Robinson. Biochimica et Biophysica Acta, 947, 209-246 (1988)
  19. Y.Q. Wang, H.M. Zhang, G.C. Zhang, Q.H. Zhou, Z.H. Fei, Z.T. Liu, Z.X. Li. J. Mol. Struct., 886 (1-3), 77-84 (2008)
  20. Слюсарева Е.А. Фотоника флуороновых красителей в гомогенных и гетерогенных биополимерных средах. Диссертация на соискание ученой степени доктора физ.-мат. наук (Красноярск, 2014). С. 41-46
  21. А.С. Курьянова, Н.А. Аксенова, М.А. Савко, Н.Н. Глаголев, А.С. Дубовик, И.Г. Плащина, П.С. Тимашев, А.Б. Соловьева. Журнал физ. химии, 96 (5), 747-753 (2022)
  22. Н.Г. Бахшиев. Спектроскопия межмолекулярных взаимодействий (Наука, Л., 1972). С. 98-145
  23. Н.Г. Бахшиев, М.И. Княжанский, В.И. Минкин, О.А. Осипов, Г.В. Сайдов. Успехи химии, 38 (9), 1644-1673 (1969)
  24. P. Suppan. Chem. Phys. Lett., 94 (3), 272-275 (1983)
  25. Дж. Лакович. Основы флуоресцентной спектроскопии (Мир, М., 1986). С. 262-344
  26. Л.В. Левшин, А.М. Салецкий. Люминесценция и ее измерения. Молекулярная люминесценция (Изд.-во МГУ, М., 1989). С. 143-155
  27. W. Misiuk, M. Jozefowicz. J. Molecular Liquids, 202, 101-106 (2015)
  28. S.E. Braslavsky. Pure Appl. Chem., 79 (3), 293-465 (2007)
  29. O. Berndt, F. Bandt, I. Eichwurzel, H. Stiel. Acta Phys. Polonica A, 95 (2), 207-220 (1999)

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.